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플라스미드

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1. 개요

플라스미드는 1952년 조슈아 레더버그에 의해 명명된 용어로, 세균 세포 내에서 독립적으로 복제되는 작은 원형 DNA 분자이다. 플라스미드는 항생제 내성, 독성 인자 생성, 특정 대사 기능 수행 등 숙주 세포에 유익한 유전자를 운반하며, 세균 접합을 통해 다른 세균으로 전달될 수 있다. 플라스미드는 크기, 복제수, 기능에 따라 다양한 종류로 분류되며, 유전자 공학에서 벡터로 사용되어 유전자 복제, 단백질 생산, 유전자 치료, 질병 모델 제작 등에 활용된다. 또한, 플라스미드는 생물정보학 소프트웨어에 의해 지원되며, 에피솜이라는 용어와 연관되어 사용되기도 한다.

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플라스미드
기본 정보
플라스미드의 단순화된 다이어그램
플라스미드의 단순화된 다이어그램
발견조슈아 레더버그
발견 연도1952년
특징
유형DNA 분자
모양원형 또는 선형
크기1 ~ 200 kbp
위치세포질, 미토콘드리아, 엽록체
복제독립적
유전 정보항생제 내성, 독성 인자, 대사 기능 등
기능
주요 기능유전자 복제 및 발현
유전자 전달
형질전환
항생제 내성 획득
생존에 유리한 기능 획득
응용 분야분자생물학 연구
유전자 치료
생명공학
합성생물학
종류
종류생식 플라스미드
저하 플라스미드
내성 플라스미드
병원성 플라스미드
콜 플라스미드
대사 플라스미드
DNA 분해 플라스미드
은폐 플라스미드
복제 및 전달
복제숙주 염색체와 독립적으로 복제
전달접합
형질 도입
형질 전환
기타 정보
추가 정보플라스미드는 바이러스의 기원과 진화에 중요한 역할을 할 수 있음
플라스미드의 이동성은 항생제 내성 확산의 주요 원인임
플라스미드는 합성생물학에서 유전자 회로 및 생물학적 장치를 구축하는 데 사용됨

2. 역사

1952년 미국의 분자 생물학자 조슈아 레더버그는 "염색체 외 유전 결정 인자"를 지칭하기 위해 '플라스미드'라는 용어를 만들었다.[11][12] 이 용어는 초창기에 복제 주기의 적어도 일부 동안 염색체 외부에 존재하는 모든 세균 유전 물질을 포함했지만, 그 설명에는 세균 바이러스가 포함되었기 때문에 플라스미드라는 개념은 자율적으로 번식하는 유전 요소로 지칭하도록 시간이 지남에 따라 구체화되었다.[17]

이후 1968년에 플라스미드라는 용어를 염색체 외 유전 요소에 대한 용어로 채택하기로 결정했으며,[13] 바이러스와 구별하기 위해 정의를 좁혀 염색체 외부에 독점적으로 또는 주로 존재하고 자율적으로 복제할 수 있으며 관련 없는 세균 간의 이동 요소를 전달하는 데 기여하는 유전 요소로 정의했다.[3][4][17]

3. 특성

플라스미드는 염색체와는 별개로 존재하며 자율적으로 증식하는 유전자로, 세포 내에서 다음 세대로 안정하게 유지 및 전달된다. 플라스미드는 복제 개시점을 가지고 있어 세포 내에서 독립적으로 복제될 수 있으며, 이러한 자기 복제 단위를 레플리콘이라고 부른다.[17] 전형적인 세균 레플리콘은 플라스미드 특이적 복제 개시 단백질(Rep) 유전자, 이터론이라고 불리는 반복 단위, DnaA 박스, 인접한 AT가 풍부한 영역과 같은 여러 요소로 구성될 수 있다.[17]

플라스미드의 크기는 1 킬로베이스 쌍(kbp) 미만의 매우 작은 것부터 수백만 염기쌍(Mbp)의 매우 큰 것까지 다양하다. 플라스미드는 일반적으로 원형이지만, 선형 플라스미드도 존재한다.[17]

플라스미드는 개별 세포에 하나에서 수백 개까지 다양한 수로 존재할 수 있으며, 이를 플라스미드 복제수라고 한다. 복제수는 플라스미드의 크기와 복제 조절 방식에 따라 결정된다. 일반적으로 큰 플라스미드는 복제수가 낮은 경향이 있다.[14] 낮은 복제수를 가진 플라스미드는 세포 분열 시 손실될 위험이 있으므로, parABS 시스템 및 parMRC 시스템과 같은 플라스미드 분리 시스템을 통해 두 개의 딸 세포에 복사본을 안정적으로 분배한다.[18]

숙주 세균에 플라스미드를 삽입하는 데는 두 가지 유형이 있다. 비통합 플라스미드는 위 그림과 같이 복제가 진행되지만, '''에피솜'''에서는 아래 그림과 같이 숙주 염색체에 통합될 수 있다.


일부 플라스미드는 숙주 염색체에 통합될 수 있으며, 이러한 통합 플라스미드는 원핵생물에서 에피솜이라고 불린다.[14]

4. 종류 및 분류

플라스미드는 여러 가지 방식으로 분류될 수 있다. 크게 접합 플라스미드와 비접합 플라스미드로 나눌 수 있다. 접합 플라스미드는 세균 접합을 촉진하는 전이 유전자를 가지고 있어, 성적 필리를 통해 다른 세균으로 전이될 수 있다.[14][20] 비접합 플라스미드는 스스로 접합을 시작할 수 없어, 접합 플라스미드의 도움을 받아야만 전이된다.[21]

플라스미드는 상용성 그룹(incompatibility group)으로도 분류된다. 미생물은 여러 종류의 플라스미드를 가질 수 있지만, 서로 다른 플라스미드가 한 세포에 존재하려면 호환성이 있어야 한다. 호환되지 않는 두 플라스미드 중 하나는 세포에서 빠르게 소실된다. 호환되지 않는 플라스미드는 같은 복제 또는 분할 메커니즘을 공유하기 때문에, 단일 세포에서 함께 유지될 수 없다.[22][23]

기능에 따른 분류는 다음과 같다:

종류설명
F-플라스미드 (Fertility plasmid)tra 유전자를 포함하며, 세균 접합을 통해 성적 필리 발현을 유발한다.[12][24] F-플라스미드는 (+) 또는 (-)로 분류되며 접합 시 공여자 또는 수용자의 차이에 기여한다.[12][24][25]
내성 (R) 플라스미드 (Resistance plasmid)항생제나 항균제에 대한 내성을 부여하는 유전자를 포함한다. 1959년에 처음 발견되었으며,[26] 세균에서 다제내성 확산의 주요 원인이다.[27][28]
Col 플라스미드 (Col plasmid)다른 세균을 죽일 수 있는 박테리오신이라는 단백질을 암호화하는 유전자를 포함한다.
분해성 플라스미드 (Degradative plasmid)톨루엔, 살리실산 등 특이한 물질의 소화를 돕는다.
독성 플라스미드 (Virulence plasmid)세균을 병원체로 만든다. (예: Agrobacterium tumefaciens의 Ti 플라스미드)[5][29]



플라스미드는 하나 이상의 기능 그룹에 속할 수 있다.

대부분 플라스미드는 이중 가닥 DNA 분자이지만, 일부는 단일 가닥 DNA 또는 이중 가닥 RNA로 구성된다. RNA 플라스미드는 비감염성 세포 외 선형 RNA 복제자로, 균류와 다양한 식물에서 발견된다. 그러나 RNA 플라스미드와 RNA 바이러스 등을 명확히 구분하기는 어렵다.[30]

크로미드는 염색체와 플라스미드의 경계에 있는 요소로, 일부 박테리아 종에서 발견된다. 이들은 핵심 유전자를 가지며 염색체와 유사한 코돈 사용을 보이지만, 플라스미드형 복제 메커니즘을 사용한다.[31]

5. 형태

플라스미드는 다양한 형태로 나타날 수 있다.


  • 열린 원형(nicked open-circular) : DNA가 원형으로 존재하나 한 가닥에 틈(Nick)이 존재한다.
  • 안정된 원형(relaxed circular) : DNA 이중나선이 틈 없이 원형으로 존재하며, 효소에 의해 안정된 상태를 유지한다.
  • 선형(linear)
  • 초나선 또는 닫힌 원형(supercoiled, or closed-circular) : DNA 가닥이 꼬여 가장 뭉친 상태로 존재한다.
  • 변성된 초나선(supercoiled denatured) : 초나선 형태를 이루나 변성된 부분이 있어 초나선에 비해 덜 밀집된 형태이다.


플라스미드 DNA는 위 5가지 형태 중 하나로 나타날 수 있으며, (특정 크기의 경우) 전기영동 시 젤에서 서로 다른 속도로 이동한다. 각 형태는 전기영동 이동성(적용된 전압에 대한 속도)이 느린 것부터 빠른 순서로 아래와 같다.

  • ''니크 개방형 고리'' DNA는 한 가닥이 절단되어 있다.
  • ''이완된 고리형'' DNA는 두 가닥 모두 절단되지 않은 완전한 상태이지만, 효소적으로 ''이완''되어(초코일 제거)있다. 이는 꼬인 연장 코드를 풀고 이완시킨 다음 자체적으로 연결하는 것으로 모델링할 수 있다.
  • ''선형'' DNA는 양쪽 가닥이 절단되었거나 DNA가 ''생체 내''에서 선형이기 때문에 자유 말단을 가지고 있다. 이는 자체적으로 연결되지 않은 전기 연장 코드로 모델링할 수 있다.
  • ''초코일'' (또는 ''공유 결합 폐쇄 고리형'') DNA는 두 가닥 모두 절단되지 않은 완전한 상태이며, 통합된 꼬임이 있어 콤팩트한 형태를 갖는다. 이는 연장 코드를 꼬고 자체적으로 연결하는 것으로 모델링할 수 있다.
  • ''초코일 변성'' DNA는 ''초코일 DNA''와 유사하지만, 페어링되지 않은 영역이 있어 약간 덜 콤팩트하다. 이는 플라스미드 준비 과정에서 과도한 알칼리성으로 인해 발생할 수 있다.


작은 선형 단편의 이동 속도는 낮은 전압에서 인가된 전압에 정비례한다. 더 높은 전압에서는 더 큰 단편이 지속적으로 증가하지만 서로 다른 속도로 이동한다. 따라서 젤의 분해능은 전압이 증가함에 따라 감소한다.

지정된 낮은 전압에서 작은 선형 DNA 단편의 이동 속도는 길이에 따라 달라진다. 큰 선형 단편(약 20kb 이상)은 길이에 관계없이 특정 고정 속도로 이동한다. 이는 분자가 '호흡'하기 때문이며, 분자의 대부분이 젤 매트릭스를 통해 선두 부분을 따른다. 제한 효소 절단은 정제된 플라스미드를 분석하는 데 자주 사용된다. 이러한 효소는 특정 짧은 서열에서 DNA를 특이적으로 절단한다. 결과적으로 생성된 선형 단편은 젤 전기영동 후에 '밴드'를 형성한다. 젤에서 밴드를 잘라내어 젤을 용해하여 DNA 단편을 방출함으로써 특정 단편을 정제할 수 있다.

초코일 DNA는 꽉 조여진 형태 때문에 선형 또는 개방형 고리형 DNA보다 젤을 통해 더 빠르게 이동한다.

6. 플라스미드 유지

일부 플라스미드는 안정적인 유지를 위해 중독 모듈 (addiction module) 또는 분리 후 살상 시스템 (postsegregational killing system, PSK)을 갖춘다.[101] 예를 들어, 대장균의 플라스미드 R1에는 hok/sok (숙주 살해/살해 억제) 시스템이 있다.[101] 이 시스템은 수명이 긴 과 수명이 짧은 해독제를 모두 생성한다. 플라스미드를 유지하는 딸 세포는 생존하지만, 플라스미드를 상속받지 못한 딸 세포는 모세포에서 남은 독으로 인해 죽거나 성장률이 저하된다. 여러 유형의 플라스미드 중독 시스템 (독소/해독소, 대사 기반, ORT 시스템)이 문헌에 기술되었으며,[102] 생명공학 (발효) 또는 생물의학 (백신 치료) 분야에 응용된다.

생명공학에 사용되는 플라스미드는 독소-항독소 중독 시스템을 거의 포함하지 않으므로, 플라스미드 손실을 방지하기 위해 항생제 압력 하에 유지해야 한다.

7. 응용

플라스미드는 유전공학에서 다양한 목적으로 활용된다. 플라스미드의 주요 용도 중 하나는 단백질을 대량으로 만드는 것이다. 연구자들은 관심 유전자를 포함하는 플라스미드를 가진 박테리아를 배양하여, 박테리아가 항생제 내성을 부여하는 단백질을 생성하는 것처럼 삽입된 유전자로부터 대량의 단백질을 생산하도록 유도할 수 있다. 이는 인슐린과 같이 필요한 단백질을 대량 생산하는 저렴하고 쉬운 방법이다.

7. 1. 벡터 (Vector)

인공적으로 제작된 플라스미드는 유전자 공학에서 벡터로 사용될 수 있다. 이러한 플라스미드는 유전학 및 생명 공학 실험실에서 중요한 도구로 사용되며, 특정 유전자를 복제 및 증폭(다수의 복제본 생성)하거나 유전자 발현시키는 데 널리 사용된다.[33] 이러한 용도로 다양한 종류의 플라스미드가 상업적으로 판매되고 있다. 복제할 유전자는 일반적으로 플라스미드에 삽입되며, 플라스미드는 사용 편의성을 위해 여러 가지 특징을 포함한다. 여기에는 특정 항생제에 대한 내성을 부여하는 유전자(암피실린이 세균주에 가장 자주 사용됨), 세균 세포가 플라스미드 DNA를 복제할 수 있도록 하는 복제 기점, 적절한 복제 부위(다중 클로닝 부위) 등이 있다.

클로닝 벡터로 널리 사용된 플라스미드 중 하나인 pBR322 플라스미드의 개략도. 플라스미드 그림에 표시된 것은, 코딩된 유전자(암피실린테트라사이클린 내성을 나타내는 amp 및 tet), 복제 기점(ori), 그리고 다양한 제한 부위 (파란색으로 표시됨)이다.


DNA 구조적 불안정성은 예기치 않은 재배열, 유전 물질의 손실 또는 획득으로 이어지는 일련의 자발적 사건으로 정의할 수 있다. 이러한 사건은 종종 이동성 요소의 전위 또는 비정규(non-B) 구조와 같은 불안정한 요소의 존재에 의해 유발된다. 세균 골격에 속하는 부속 영역은 광범위한 구조적 불안정성 현상에 관여할 수 있다. 유전적 불안정성의 잘 알려진 촉매제로는 직접 반복, 역 반복 및 직렬 반복이 있으며, 이는 많은 상업적으로 이용 가능한 클로닝 및 발현 벡터에서 두드러지게 나타나는 것으로 알려져 있다.[34] 삽입 서열은 삭제 및 재배열, 인접한 유전자 발현의 활성화, 다운-조절 또는 비활성화로 이어져 플라스미드 기능 및 수율에 심각한 영향을 미칠 수도 있다.[35] 따라서 불필요한 비코딩 골격 서열을 줄이거나 완전히 제거하면 이러한 사건이 발생할 가능성이 현저히 감소하고, 결과적으로 플라스미드의 전반적인 재조합 가능성이 감소할 것이다.[36][37]

플라스미드는 단백질을 대량으로 만드는 데에도 사용된다. 이 경우 연구자들은 관심 유전자를 포함하는 플라스미드를 가진 박테리아를 배양한다. 박테리아가 항생제 내성을 부여하는 단백질을 생성하는 것처럼, 삽입된 유전자로부터 대량의 단백질을 생성하도록 유도할 수도 있다. 이것은 단백질을 대량 생산하는 저렴하고 쉬운 방법이다. 예를 들어, 인슐린 유전자를 포함하는 플라스미드를 가진 대장균의 빠른 증식을 활용하면 인슐린을 대량 생산할 수 있다.

플라스미드는 세포에서 부족한 단백질을 발현시키기 위해 유전자 치료의 잠재적 치료법으로 유전자 전달에 사용될 수 있다. 일부 형태의 유전자 치료는 치료 유전자를 인간 게놈 내의 미리 선택된 염색체 표적 부위에 삽입해야 한다. 플라스미드 벡터는 이러한 목적으로 사용될 수 있는 여러 접근 방식 중 하나이다. 아연 핑거 뉴클레아제 (ZFN)는 DNA 게놈에 부위 특이적 이중 가닥 절단을 유발하고 상동 재조합을 일으키는 방법을 제공한다. ZFN을 암호화하는 플라스미드는 세포 손상, 암 유발 돌연변이 또는 면역 반응을 피하기 위해 치료 유전자를 특정 부위에 전달하는 데 도움이 될 수 있다.[43]

7. 2. 클로닝 (Cloning)

클로닝 벡터로 널리 사용된 최초의 플라스미드 중 하나인 pBR322 플라스미드의 개략도. 플라스미드 다이어그램에는 암호화된 유전자(''amp'' 및 ''tet''은 각각 암피실린테트라사이클린 내성), 복제 기점(''ori''), 다양한 제한 효소 절단 부위(파란색으로 표시)가 표시되어 있다.


플라스미드는 유전자 공학에서 벡터로 사용될 수 있으며, 유전학 및 생명 공학 실험실에서 특정 유전자를 복제 및 증폭하거나 유전자 발현시키는 데 널리 사용된다.[33] 이러한 용도로 다양한 종류의 플라스미드가 상업적으로 판매되고 있다.

플라스미드는 가장 일반적으로 사용되는 세균의 클로닝 벡터이다.[91] 클로닝을 위해 인공적으로 제작된 플라스미드는 DNA 단편을 삽입할 수 있는 부위를 포함한다. 예를 들어 여러 개의 제한 부위를 갖는 멀티 클로닝 사이트 또는 폴리링커를 이용하여 DNA 단편을 라이게이션(ligation)할 수 있도록 설계할 수 있다. 목적 유전자가 삽입된 후, 플라스미드는 형질전환 과정을 통해 세균에 도입된다.

이러한 플라스미드에는 선택 가능한 마커로서 보통 항생제 내성 유전자가 포함되어 있어, 특정 항생제를 포함하는 선택적 증식 배지에서 세균이 생존 및 증식할 수 있게 한다. 형질전환 후의 세포는 선택 배지에 노출되며, 플라스미드를 포함하는 세포만이 생존할 수 있다. 이와 같이 항생제는 플라스미드 DNA를 포함하는 세균만을 선택하기 위한 필터로 기능한다. 벡터는 또한 클로닝된 삽입 서열을 갖는 플라스미드를 쉽게 선택할 수 있도록 다른 마커 유전자 또는 리포터 유전자를 포함하기도 한다. 다음으로, 플라스미드를 포함하는 세균을 대량으로 증식시켜 회수하고, 그 후, 플라스미드 조제를 통해 목적하는 플라스미드를 분리할 수 있다.

플라스미드 클로닝 벡터는 보통 최대 15kbp 정도의 DNA 단편을 클로닝하는 데 사용된다.[92] 더 긴 DNA를 클로닝하려면, 용원성 유전자가 제거된 λ 파지, 코스미드, 세균 인공 염색체(BAC), 또는 효모 인공 염색체(YAC)가 사용된다.

7. 3. 단백질 생산 (Protein Production)

플라스미드는 특정 단백질을 대량 생산하는데 사용된다. 연구자들은 원하는 유전자가 삽입된 플라스미드를 가진 세균을 배양하여, 해당 유전자로부터 대량의 단백질이 생산되도록 유도한다. 이는 인슐린처럼 의료용으로 사용되는 단백질이나, 산업적으로 유용한 효소 등을 대량으로 생산하는 저렴하고 쉬운 방법이다.[43]

7. 4. 유전자 치료 (Gene Therapy)

플라스미드는 유전자 치료에서 결손된 단백질을 발현시키기 위해 유전자를 전달하는 데 사용될 수 있다. 유전자 치료의 일부 형태는 치료 유전자를 인간 게놈 내의 미리 선택된 염색체 표적 부위에 삽입해야 한다. 플라스미드 벡터는 이러한 목적에 사용되는 여러 방법 중 하나이다. 아연 핑거 뉴클레아제(ZFN)는 DNA 게놈에 부위 특이적 이중 가닥 절단을 유발하고 상동 재조합을 일으킨다. ZFN을 암호화하는 플라스미드는 세포 손상, 암 유발 돌연변이 또는 면역 반응을 피하기 위해 치료 유전자를 특정 부위에 전달하는 데 도움이 될 수 있다.[43]

7. 5. 질병 모델 (Disease Models)

플라스미드는 역사적으로 배아줄기세포를 유전자 조작하여 유전 질환 모델 쥐를 제작하는 데 사용되어 왔다. 그러나 플라스미드를 이용한 기술은 효율이 제한적이었으며, 사람 세포를 이용한 보다 정확한 모델 제작은 어려웠다. 오늘날에는 아데노 부속 바이러스 재조합 기술과 아연 핑거 뉴클레아제의 개발로 새로운 세대의 동종 유전자형 인간 질환 모델 제작이 가능해지고 있다.[5]

7. 6. 생합성 유전자 클러스터(BGC, Biosynthetic Gene Cluster)

플라스미드는 생합성 유전자 클러스터(BGC, Biosynthetic Gene Cluster)의 수송을 돕는다. 생합성 유전자 클러스터는 특수 대사 산물(공식적으로 2차 대사 산물이라고 함) 생산에 필요한 모든 효소를 포함하는 유전자 집합체이다.[44] 플라스미드를 이용해 BGC를 전달하면 특수 대사 산물을 대량 생산할 수 있는 적합한 숙주를 사용할 수 있다는 장점이 있다. 이러한 분자 중 일부는 미생물 집단을 제어할 수 있다.[45][46] 플라스미드는 여러 BGC를 포함하고 발현할 수 있으며, BGC 전달 전용으로 사용되는 플라스미드도 있다.[46] BGC는 플라스미드 벡터를 활용하여 숙주 유기체의 염색체로 전달될 수 있으며, 이를 통해 유전자 녹아웃 실험을 연구할 수 있다.[47] 미생물은 BGC 흡수를 위해 플라스미드를 사용함으로써 항생제 내성 생합성 유전자뿐만 아니라 독소/항독소 생산에도 제한을 받지 않아 이점을 얻는다.[48]

8. 플라스미드 DNA 추출

플라스미드는 특정 염기 서열을 정제하는 데 자주 이용되는데, 이는 플라스미드가 나머지 게놈에서 쉽게 정제될 수 있기 때문이다. 플라스미드는 분자 클로닝 및 벡터로 사용하기 위해 분리해야 하는 경우가 많다.

세균으로부터 플라스미드 DNA를 분리하는 방법에는 플라스미드 추출 키트(미니프렙에서 맥시프렙 또는 벌크프렙)를 사용하거나, 알칼리 용해, 효소 용해, 기계적 용해를 사용하는 등 여러 가지 방법이 있다.[103] 미니프렙은 여러 세균 클론에서 플라스미드가 올바른지 빠르게 확인하는 데 사용될 수 있다. 얻을 수 있는 것은 소량의 불순한 플라스미드 DNA로, 제한 효소 절단을 이용한 분석 및 일부 클로닝 기술에 충분하다.

맥시프렙은 훨씬 더 많은 양의 세균 현탁액을 배양하여 수행할 수 있다. 본질적으로 이는 확장된 미니프렙에 추가 정제를 거치는 것이다. 이를 통해 비교적 많은 양()의 매우 순수한 플라스미드 DNA를 얻을 수 있다.

다양한 규모, 순도 및 자동화 수준으로 플라스미드 추출을 수행하기 위해 많은 상업용 키트가 개발되었다.

9. 생물정보학 (Bioinformatics)

분자 생물학 기법으로서 플라스미드 사용은 여러 생물정보학 소프트웨어에 의해 지원된다. 이러한 프로그램들은 플라스미드 벡터의 DNA 서열을 기록하고, 제한 효소의 절단 부위를 예측하며, 조작을 계획하는 데 도움을 준다. 플라스미드 맵을 처리하는 소프트웨어 패키지 예시로는 ApE, Clone Manager, GeneConstructionKit, Geneious, Genome Compiler, LabGenius, Lasergene, MacVector, pDraw32, Serial Cloner, UGENE, VectorFriends, Vector NTI, WebDSV 등이 있다. 이러한 소프트웨어들은 습식 실험을 수행하기 전에 전체 실험을 컴퓨터 시뮬레이션으로 수행하는 데 도움을 준다.[62]

수많은 플라스미드가 수년에 걸쳐 만들어졌으며 연구자들은 Addgene(https://www.addgene.org), BCCM/GeneCorner(https://bccm.belspo.be/about-GeneCorner)와 같은 플라스미드 데이터베이스에 플라스미드를 제공해 왔다. 연구 목적으로 해당 데이터베이스에서 플라스미드를 찾고 요청할 수 있다.

연구자들은 또한 종종 플라스미드 서열을 NCBI 데이터베이스(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/)에 업로드하며, 여기서 특정 플라스미드의 서열을 검색할 수 있다.

10. 에피솜 (Episome)

에피솜이라는 용어는 1958년 프랑수아 자코브와 엘리 볼만이 자율적으로 복제되거나 염색체에 통합될 수 있는 염색체 외 유전 물질을 지칭하기 위해 도입하였다.[49][50] 그러나 이 용어가 도입된 이후, 자율적으로 복제되는 염색체 외 DNA에 대해서는 플라스미드가 더 선호되는 용어가 되면서 그 사용법이 바뀌었다. 1968년 런던에서 열린 심포지엄에서 일부 참가자들은 에피솜이라는 용어를 폐기할 것을 제안했지만, 다른 참가자들은 그 의미를 변경하여 이 용어를 계속 사용했다.[51][52]

오늘날 일부 학자들은 세균에서 염색체에 통합될 수 있는 플라스미드를 지칭하는 맥락에서 에피솜이라는 용어를 사용한다.[53] 통합 플라스미드는 여러 세대에 걸쳐 세포 내에서 복제되고 안정적으로 유지될 수 있지만, 어떤 단계에서는 독립적인 플라스미드 분자로 존재하게 된다. 진핵생물에서 에피솜이라는 용어는 핵에서 복제될 수 있는 비통합 염색체 외 닫힌 원형 DNA 분자를 의미한다.[54][55] 이러한 예시 중 가장 흔한 것은 헤르페스바이러스, 아데노바이러스, 폴리오마바이러스를 포함한 바이러스이지만, 일부는 플라스미드이다. 다른 예로는 인위적인 유전자 증폭이나 병리학적 과정(예: 암세포 변환) 동안 발생할 수 있는 이중 분체 염색체와 같은 비정상적인 염색체 조각이 있다. 진핵생물의 에피솜은 DNA가 안정적으로 유지되고 숙주 세포와 함께 복제된다는 점에서 세균의 플라스미드와 유사하게 작동한다. 폭스바이러스 감염과 같이 세포질 바이러스 에피솜도 발생할 수 있다. 헤르페스바이러스와 같은 일부 에피솜은 세균 파지와 유사한 회전 원형 메커니즘으로 복제된다. 다른 에피솜은 양방향 복제 메커니즘(''세타 타입'' 플라스미드)을 통해 복제된다. 어떤 경우든 에피솜은 숙주 세포 염색체와 물리적으로 분리되어 있다. 엡스타인-바 바이러스와 카포시 육종 관련 헤르페스바이러스를 포함한 여러 암 바이러스는 암세포에서 잠복 상태로 유지되며, 염색체와 구별되는 에피솜으로 유지되면서 암세포 증식을 촉진하는 종양 유전자를 발현한다. 암에서 이러한 에피솜은 세포가 분열할 때 숙주 염색체와 함께 수동적으로 복제된다. 이러한 바이러스 에피솜이 다수의 바이러스 입자를 생성하기 위해 용균성 주기를 시작하면 일반적으로 숙주 세포를 죽이는 세포 내 선천 면역 방어 메커니즘을 활성화한다.

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