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DNA 추출

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1. 개요

DNA 추출은 세포에서 DNA를 분리하는 과정으로, 기본적으로 세포 수집, 세포막 파괴, DNA 정제, 분리 및 용해 단계를 거친다. 세포 용해, DNA 분리, DNA 정제 및 DNA 용해는 DNA 추출 과정의 세부 단계에 해당한다. DNA 추출 방법에는 유기 용매 추출, Chelex 추출, 고체상 추출 등이 있으며, 특수한 경우 고고학 샘플, 억제제가 포함된 샘플, 두꺼운 세포벽을 가진 미생물, 혼합 DNA 샘플, 세포외 DNA 추출 등 특정 기술이 필요하다. 추출된 DNA는 디페닐아민 지시약, 분광광도법, 겔 전기 영동, 형광 측정법, PCR 등을 통해 검출 및 품질 관리를 하며, 에탄올 침전, 완충액 보관, 냉동 보관 등의 방법을 통해 보관한다.

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DNA 추출
개요
정의세포에서 DNA를 분리하는 과정
최초 발견프리드리히 미셔
최초 발견 시기1869년
원리
일반적인 단계세포 용해
막 파괴
DNA 분리
방법
세포 용해물리적 방법 (예: 균질화, 초음파 처리)
화학적 방법 (예: 계면활성제, 효소)
DNA 분리페놀-클로로포름 추출
염석
실리카 막 기반 추출
자성 비드 기반 추출
응용 분야
분자 생물학PCR
DNA 시퀀싱
유전자 클로닝
진단유전자 검사
감염병 진단
법의학DNA 프로파일링

2. 기본 절차

DNA 추출의 기본 절차는 다음과 같다.

1. 연구할 세포를 수집한다. 이때 수집량은 사용하는 방법에 따라 다르다.

2. 세포막을 부숴 DNA를 노출시킨다(세포 용해).


3. 이 용액을 농축된 염 용액(식염수)으로 처리하여 부서진 단백질, 지질 및 RNA와 같은 파편을 덩어리로 만든다.

4. 덩어리진 세포 파편을 DNA에서 분리하기 위해 용액을 원심 분리한다.

5. 세포 용해 단계에서 사용되는 세제, 단백질, 염 및 시약으로부터 DNA를 정제한다.
6. DNA에 결합된 세포 및 히스톤 단백질은 프로테아제를 첨가하거나, 나트륨 또는 암모늄 아세테이트로 단백질을 침전시키거나, DNA 침전 전에 페놀-클로로포름 혼합물로 추출하여 제거한다.

분리 후, DNA는 일반적으로 TE 완충용액 또는 초순수에 있는 약알칼리성 완충용액에 용해된다.

2. 1. 세포 용해

세포막을 부수면 내부의 세포질과 함께 DNA가 노출된다(세포 용해).[1] 세포막과 핵의 지질은 세제계면활성제로 분해된다.[1] 프로테아제를 추가하여 단백질을 분해하거나, RNase를 추가하여 RNA를 분해할 수 있다.[1]

2. 2. DNA 분리

DNA 분리의 기본 절차는 다음과 같다.

1. 연구할 세포를 수집한다. 이때 수집량은 사용하는 방법에 따라 달라진다.

2. 세포막을 부수면 내부의 세포질과 함께 DNA가 노출된다(세포 용해).
3. 이 용액을 농축된 염 용액(식염수)으로 처리하여 부서진 단백질, 지질 및 RNA와 같은 파편을 함께 덩어리로 만든다.

4. 덩어리진 세포 파편을 DNA에서 분리하기 위해 용액을 원심 분리한다.

5. 세포 용해 단계에서 사용되는 세제, 단백질, 염 및 시약으로부터 DNA를 정제한다. 이때 가장 일반적으로 사용되는 절차는 다음 세 가지이다.

  • 일반적으로 0°C에 가까운 에탄올 또는 이소프로판올에 의한 에탄올 침전. DNA는 이러한 알코올에 녹지 않기 때문에 함께 응집되어 원심분리 시 펠릿을 생성한다. 일반적으로 아세트산 나트륨을 첨가하여 이온 강도를 증가시켜 DNA의 침전을 개선한다.
  • 페놀로 하여금 시료의 단백질을 변성시키게 하는 페놀-클로로포름 추출. 샘플을 원심분리한 후 변성된 단백질은 유기상에 머무르고 핵산을 함유한 수상은 클로로포름과 혼합되어 용액에서 페놀 잔류물을 제거한다.
  • 버퍼의 pH 및 염 농도에 따라 핵산이 고체상(실리카 또는 기타)에 결합(흡착)할 수 있다는 사실에 의존하는 미니컬럼 정제.


DNA에 결합된 세포 및 히스톤 단백질은 프로테아제를 첨가하거나, 나트륨 또는 암모늄 아세테이트로 단백질을 침전시키거나, DNA 침전 전에 페놀-클로로포름 혼합물로 추출하는 방법 등으로 제거할 수 있다.

분리 후, DNA는 일반적으로 TE 완충용액 또는 초순수에 있는 약알칼리성 완충용액에 용해된다.

2. 3. DNA 정제

세포 용해 단계에서 사용되는 세제, 단백질, 염 및 시약으로부터 DNA를 정제하는 일반적인 절차는 다음과 같다.

  • 대개 0°C에 가까운 에탄올 또는 아이소프로판올을 사용한 에탄올 침전. DNA는 이러한 알코올에 녹지 않기 때문에 함께 응집되어 원심분리 시 펠릿을 생성한다. 일반적으로 아세트산 나트륨을 첨가하여 이온 강도를 증가시켜 DNA의 침전을 개선한다.[1]
  • 페놀-클로로포름 추출은 페놀이 시료의 단백질을 변성시키는 과정이다. 샘플의 원심분리 후 변성된 단백질은 유기상에 남아 있고, 핵산을 포함하는 수성상은 용액에서 페놀 잔류물을 제거하기 위해 클로로포름과 혼합된다.[1]
  • 미니컬럼 정제는 핵산이 완충액의 pH 및 염 농도에 따라 고체상(실리카 또는 기타)에 결합(흡착)될 수 있다는 사실에 의존한다.[1]


DNA에 결합된 세포 및 히스톤 단백질은 프로테아제를 첨가하거나, 나트륨 또는 아세트산암모늄으로 단백질을 침전시키거나, DNA 침전 전에 페놀-클로로포름 혼합물로 추출하여 제거할 수 있다.[1]

분리 후, DNA는 일반적으로 TE 완충용액 또는 초순수에 있는 약알칼리성 완충용액에 용해된다.[1]

2. 4. DNA 용해

세포막을 부수면 내부의 세포질과 함께 DNA가 노출된다(세포 용해). 세포막과 핵의 지질은 세제계면활성제로 분해된다. 프로테아제를 추가하여 단백질을 분해하거나, RNase를 추가하여 RNA를 분해할 수도 있다. 이 용액을 농축된 염 용액(식염수)으로 처리하여 부서진 단백질, 지질 및 RNA와 같은 파편을 함께 덩어리로 만든다. 덩어리진 세포 파편을 DNA에서 분리하기 위해 용액을 원심 분리한다. 세포 용해 단계에서 사용되는 세제, 단백질, 염 및 시약으로부터 DNA를 정제한다. 이때 가장 일반적으로 사용되는 절차는 다음 3가지이다.

  • 일반적으로 0°C에 가까운 에탄올 또는 이소프로판올에 의한 에탄올 침전. DNA는 이러한 알코올에 녹지 않기 때문에 함께 응집되어 원심분리 시 펠릿을 생성한다. 일반적으로 아세트산 나트륨을 첨가하여 이온 강도를 증가시켜 DNA의 침전을 개선한다.
  • 페놀로 하여금 시료의 단백질을 변성시키게 하는 페놀-클로로포름 추출. 샘플을 원심분리한 후 변성된 단백질은 유기상에 머무르고 핵산을 함유한 수상은 클로로포름과 혼합되어 용액에서 페놀 잔류물을 제거한다.
  • 버퍼의 pH 및 염 농도에 따라 핵산이 고체상(실리카 또는 기타)에 결합(흡착)할 수 있다는 사실에 의존하는 미니컬럼 정제.


DNA에 결합된 세포 및 히스톤 단백질은 프로테아제를 첨가하거나, 나트륨 또는 아세트산암모늄으로 단백질을 침전시키거나, DNA 침전 전에 페놀-클로로포름 혼합물로 추출하는 방법 등으로 제거할 수 있다.

분리 후, DNA는 일반적으로 TE 완충용액 또는 초순수에 있는 약알칼리성 완충용액에 용해된다.

3. DNA 추출 방법

일반적인 DNA 추출 방법에는 유기 추출, Chelex 추출, 고체상 추출이 있다.[21] 이 방법들은 모두 분리된 DNA를 산출하지만, DNA의 품질과 양은 각각 다르다. DNA 추출 방법을 선택할 때는 비용, 시간, 안전성, 오염 위험 등 여러 요소를 고려해야 한다.

여러 생물학적 샘플에 대해 상업적으로 이용 가능한 DNA 추출 키트가 있다. DNA 추출 방법에는 유기 용매 추출, Chelex 추출, 고체상 추출이 있으며,[8] 이 방법들은 일관성 있게 분리된 DNA를 얻지만, DNA의 질과 양에서 차이를 보인다.


  • 유기 추출, Chelex 추출, 고체상 추출에 대한 자세한 내용은 각 하위 섹션을 참고.

3. 1. 유기 추출 (Organic Extraction)

유기 추출은 여러 화학 용액을 추가하고 배양하는 과정을 포함한다.[21] 이 과정에는 용해 단계, 페놀 클로로포름 추출, 에탄올 침전, 세척 단계가 포함된다. 유기 추출은 저렴하고 순수한 DNA를 대량으로 얻을 수 있어 실험실에서 자주 사용된다. 비교적 간단하지만 여러 단계가 필요하고 다른 방법에 비해 시간이 오래 걸린다. 또한 페놀, 클로로포름과 같은 독성 화학물질을 사용하며, DNA를 여러 튜브에 옮기는 과정에서 오염 위험이 증가한다.[22] DNA 유기 추출 기반의 여러 프로토콜이 수십 년 전에 효과적으로 개발되었으며,[23] 최근 몇 년 동안 이러한 프로토콜의 개선되고 실용적인 버전도 개발되어 발표되었다.[24]

3. 2. Chelex 추출 (Chelex Extraction)

Chelex 추출은 Chelex 수지를 시료에 넣고 끓인 후, 소용돌이치게 하고 원심 분리하는 방법이다. 세포 물질은 Chelex 구슬에 결합하지만, DNA는 상등액에서 얻을 수 있다.[22] 이 방법은 유기 추출보다 훨씬 빠르고 간단하며, 하나의 튜브만 사용하므로 DNA 오염 위험이 적다. 그러나 Chelex 추출은 많은 양의 DNA를 얻을 수 없고, 얻은 DNA는 단일 가닥이므로 RFLP 분석에는 사용할 수 없고 PCR 기반 분석에만 사용 가능하다.[22]

3. 3. 고체상 추출 (Solid-Phase Extraction)

고체상 추출은 DNA가 실리카에 결합하는 성질을 이용한다. DNA를 포함하는 샘플을 실리카 겔이나 실리카 비드, 그리고 카오트로픽 염이 들어있는 컬럼에 넣는다. 카오트로픽 염은 DNA 가닥 사이의 수소 결합을 끊고 핵산을 소수성으로 만들어 DNA와 실리카의 결합을 돕는다. 이렇게 인산염 잔기가 노출되어 흡착에 사용될 수 있게 된다.[25] DNA는 실리카에 결합하고, 나머지 용액은 에탄올로 씻어내 카오트로픽 염과 불필요한 성분을 제거한다.[21] 이후 DNA는 저염 수용액으로 재수화되어 비드에서 용출된다.

이 방법은 PCRRFLP 분석에 모두 사용 가능한 고품질의 이중 가닥 DNA를 주로 생성한다. 이 과정은 자동화가 가능하며,[22] 페놀-클로로포름 방법보다는 처리량이 높지만 낮다. 전체 과정이 하나의 튜브에서 완료되는 1단계 방식이기 때문에 오염 위험이 낮아 법의학적 DNA 추출에 매우 유용하다. 여러 회사에서 다양한 고체상 추출 상용 키트를 제조 및 판매하고 있다. 다만, 유기 추출이나 Chelex 추출보다 비용이 비싸다는 단점이 있다.

4. 특수 유형의 DNA 추출

특정 유형의 DNA를 추출하는 데에는 특별한 기술이 필요하다. 복잡한 DNA 분리가 요구되는 일반적인 샘플은 다음과 같다:


  • 부분적으로 분해된 DNA를 포함하는 고고학 샘플[26]
  • 토양, 남색 및 기타 직물 염료의 부식산, 혈액 내 헤모글로빈 등 후속 분석, 특히 PCR을 억제하는 물질을 포함하는 샘플
  • 효모처럼 두꺼운 세포벽을 가진 미생물 샘플
  • 여러 출처에서 혼합된 DNA를 포함하는 샘플


세포외 DNA는 일반적으로 분리하기 쉽다. 특히 플라스미드는 세포 용해 후 단백질 침전을 통해 쉽게 분리할 수 있다. 이 과정에서 염색체 DNA는 불용성 부분에 갇히고, 원심분리 후 플라스미드 DNA는 가용성 부분에서 정제된다.

Hirt DNA 추출은 포유동물 세포에서 모든 염색체 외 DNA를 분리하는 방법이다. Hirt 추출은 고분자량 핵 DNA를 제거하고, 저분자량 미토콘드리아 DNA와 바이러스성 에피솜만을 남긴다.

4. 1. 고고학 샘플

일부 샘플에서 DNA를 분리하려면 특정 기술을 선택해야 한다. 복잡한 DNA 분리가 필요한 일반적인 샘플은 다음과 같다.

  • 부분적으로 분해된 DNA를 포함하는 고고학 샘플.[26][13]

4. 2. 억제제를 포함하는 샘플

일부 샘플에서 DNA를 분리하려면 특정 기술을 선택해야 한다. 복잡한 DNA 분리가 필요한 일반적인 샘플은 다음과 같다.[26]

  • 후속 분석 절차, 특히 PCR의 억제제를 포함하는 샘플 (예: 토양의 휴믹산, 인디고 및 기타 직물 염료, 혈액 내 헤모글로빈)

4. 3. 두꺼운 세포벽을 가진 미생물

효모와 같이 두꺼운 세포벽을 가진 미생물의 샘플에서 DNA를 추출하려면 특별한 기술이 필요하다.[26] 이러한 미생물의 경우, 세포벽이 두꺼워 DNA 분리가 더 어렵다.

4. 4. 혼합 DNA 샘플

일부 샘플에서 DNA를 분리하려면 특정 기술을 선택해야 한다. 복잡한 DNA 분리가 필요한 일반적인 샘플은 다음과 같다.

  • 부분적으로 분해된 DNA를 포함하는 고고학 샘플.[26]
  • 토양, 남색 및 기타 직물 염료의 부식산 또는 혈액 내 헤모글로빈과 같은 후속 분석 절차의 억제제, 특히 PCR 억제제를 포함하는 샘플.
  • 효모와 같은 두꺼운 세포벽을 가진 미생물의 샘플.
  • 여러 출처의 혼합 DNA를 포함하는 샘플.

4. 5. 세포외 DNA 추출

세포외 DNA는 일반적으로 분리하기 쉽다. 특히 플라스미드는 세포 용해 후 단백질을 침전시켜 분리할 수 있는데, 이 과정에서 염색체 DNA는 불용성 부분에 갇히고 원심 분리 후 플라스미드 DNA는 가용성 부분에서 정제할 수 있다.

4. 5. 1. Hirt DNA 추출

Hirt DNA 추출은 포유류 세포에서 모든 세포외 DNA를 분리하는 방법이다.[13] Hirt 추출 과정은 고분자량의 핵 DNA를 제거하고 저분자량의 미토콘드리아 DNA와 세포 내에 존재하는 모든 바이러스성 에피솜만 남긴다.[26]

5. DNA 검출 및 품질 관리

디페닐아민(DPA) 지시약을 통해 DNA 존재를 확인할 수 있다. 이 과정은 DNA의 화학적 가수분해를 포함한다. 산성 용액에서 가열하면(예: ≥95℃), 데옥시리보스 당을 필요로 하는 반응이 일어나므로 DNA에 특이적이다. 이 조건에서 2-데옥시리보스는 w-하이드록시레불리닐 알데히드로 전환되고, 이 알데히드는 디페닐아민과 반응하여 파란색 화합물을 생성한다. DNA 농도는 분광 광도계를 사용하여 600 nm에서 용액의 흡광도를 측정하고, 알려진 DNA 농도의 표준 곡선과 비교하여 결정한다.

핵산 정량을 위해 260 nm 및 280 nm 파장에서 DNA 용액의 흡광도를 측정하여 DNA 순도를 확인한다. 제한 효소로 DNA를 절단하고, 아가로스 젤 전기 영동을 통해 실행한 후, 에티듐 브로마이드(EtBr)나 다른 염색약으로 염색하여 DNA 강도를 알려진 농도의 DNA 마커와 비교하여 DNA를 정량할 수 있다.

서던 블롯 기술을 사용하면, 정량화된 DNA를 PCR 및 RFLP 분석을 통해 추가로 분리하고 검사할 수 있다. 이러한 절차는 게놈 내 반복 서열을 구별할 수 있게 한다. 법의학 과학자들은 이러한 기술을 사용하여 비교, 식별 및 분석을 수행한다.[7]

5. 1. DNA 검출

디페닐아민(DPA) 지시약은 DNA의 존재를 확인한다. 이 과정은 DNA의 화학적 가수분해를 포함한다. 산성 용액에서 가열하면(예: ≥95℃), 반응은 데옥시리보스 당을 필요로 하므로 DNA에 특이적이다. 이러한 조건에서, 2-데옥시리보스는 w-하이드록시레불리닐 알데히드로 전환되며, 이 알데히드는 화합물인 디페닐아민과 반응하여 파란색 화합물을 생성한다. DNA 농도는 분광 광도계를 사용하여 600 nm에서 용액의 흡광도 강도를 측정하고, 알려진 DNA 농도의 표준 곡선과 비교하여 결정할 수 있다.

260 nm 및 280 nm 파장에서 DNA 용액의 흡광도 강도를 측정하는 것은 DNA 순도를 측정하는 데 사용된다. DNA는 제한 효소로 DNA를 절단하고, 아가로스 젤 전기 영동에서 실행한 다음, 에티듐 브로마이드(EtBr) 또는 다른 염료로 염색하고, DNA의 강도를 알려진 농도의 DNA 마커와 비교하여 정량할 수 있다.

서던 블롯 기술을 사용하여, 이 정량화된 DNA는 PCR 및 RFLP 분석을 사용하여 추가로 분리하고 검사할 수 있다. 이러한 절차는 게놈 내 반복 서열의 차별화를 허용한다. 이것은 법의학 과학자들이 비교, 식별 및 분석에 사용하는 기술이다.[7]

5. 2. 품질 관리 기술

디페닐아민(DPA) 지시약은 DNA 존재 여부를 확인한다. 이 절차는 DNA의 화학적 가수분해를 포함한다. 가열될 때(예: ≥95°C) 산에서 반응은 데옥시리보스 당을 필요로 하므로 DNA에 특이적이다. 이러한 조건에서 2-데옥시리보스는 w-히드록시레불리닐 알데히드로 전환되고, 이는 디페닐아민과 반응하여 청색 화합물을 생성한다. DNA 농도는 600에서 용액의 흡광도 강도를 측정하여 결정할 수 있다. 분광광도계로 흡광도를 측정하고 알려진 DNA 농도의 표준 곡선과 비교한다.[16]

260nm 및 280nm 파장에서 DNA 용액의 흡광도를 측정하는 것은 DNA 순도의 척도로 사용된다. DNA는 제한 효소로 절단하고, 아가로스 겔에서 실행하고, 브로민화 에티듐(EtBr) 또는 다른 염색제로 염색하고, DNA의 강도를 알려진 농도의 DNA 마커와 비교하여 정량할 수 있다.[17]

서던 블롯 기술을 사용하여 이 정량화된 DNA를 분리하고 PCRRFLP 분석을 사용하여 추가로 검사할 수 있다. 이러한 절차는 게놈 내에서 반복되는 서열의 분화를 허용한다. 법의학 과학자들이 비교, 식별 및 분석에 사용하는 것은 바로 이러한 기술이다.[18]

추출된 DNA의 품질을 보장하기 위해 사용되는 여러 품질 관리 기술은 다음과 같다.

기술설명
분광 광도법DNA 샘플의 농도와 순도를 측정하는 데 널리 사용되는 방법이다. 260 nm와 280 nm에서 흡광도 비율은 DNA 샘플의 순도를 결정하는 데 사용된다.
젤 전기 영동DNA 샘플의 크기와 무결성을 시각화하고 비교하는 데 사용된다. DNA는 아가로스 젤에 로딩된 다음 전기장에 노출되어 젤을 통과하여 이동한다. DNA의 이동은 브로민화 에티듐을 사용하여 시각화할 수 있다.
형광 측정법특정 파장의 빛에 의해 여기될 때 샘플의 형광을 측정하여 핵산의 농도를 결정하는 방법이다. 핵산에 특이적으로 결합하고 높은 형광 강도를 갖는 염료를 사용한다.
PCRDNA의 특정 영역을 증폭하는 기술이며, DNA의 작은 조각을 증폭하여 품질 관리 방법으로도 사용된다. 증폭이 성공하면 추출된 DNA의 품질이 좋고 분해되지 않았음을 의미한다.
큐빗 형광 광도계형광 염료를 사용하여 샘플의 DNA와 RNA 농도를 측정하는 기기이다. DNA 샘플의 농도를 결정하는 데 사용할 수 있는 빠르고 민감한 방법이다.
바이오분석기전기 영동을 사용하여 DNA, RNA 및 단백질 샘플을 분리하고 분석하는 기기이다. DNA 샘플의 크기, 무결성 및 순도에 대한 자세한 정보를 제공할 수 있다.


6. DNA 보관

DNA 보관은 DNA 추출 과정에서 중요한 부분으로, 이후의 연구를 위해 추출된 DNA의 품질과 안정성을 유지하는 것을 목표로 한다.[15]

DNA 보관 방법 중 하나는 에탄올 침전법이다. 이 방법은 추출된 DNA에 에탄올과 염화나트륨 또는 아세트산칼륨과 같은 염을 첨가하여 DNA를 침전시킨다. 그 후 원심분리를 통해 DNA를 펠렛 형태로 만들고, 70% 에탄올로 세척하여 남아있는 불순물을 제거한다. 마지막으로 DNA 펠렛을 공기 중에서 건조시킨 후, 트리스-EDTA (TE) 완충액과 같은 완충액에 넣어 보관한다.

다른 방법으로는 DNA를 TE 완충액과 같은 완충액이나 글리세롤, DMSO와 같은 동결 보호제를 첨가하여 -20℃ 또는 -80℃에서 냉동 보관하는 방법이 있다. 이 방법은 DNA의 품질을 유지하고 DNA 분해 효소의 활성을 억제한다.

어떤 보관 방법을 선택할지는 DNA가 사용될 실험에 따라 결정된다. 예를 들어, PCR에 사용될 DNA는 4℃에서 TE 완충액에 보관할 수 있지만, 장기간 보관하거나 운반할 경우에는 -20℃에서 에탄올에 보관하는 것이 좋다. 추출된 DNA는 젤 전기영동이나 분광 광도법 등을 통해 주기적으로 품질과 완전성을 확인해야 한다. 또한, 온도와 습도 등 보관 조건을 기록하고 관리해야 한다.

DNA는 시간이 지남에 따라 분해될 수 있으므로, 장기적인 안정성을 고려하는 것이 중요하다. 따라서 추출된 DNA는 가능한 한 짧은 기간 동안 보관해야 하며, 분해 위험을 최소화할 수 있는 보관 조건을 선택해야 한다.

결론적으로, 추출된 DNA는 이후의 실험에서 안정성과 품질을 유지하기 위해 최적의 조건에서 보관해야 한다.

참조

[1] 웹사이트 Fluorescence In Situ Hybridization (FISH) https://www.genome.g[...] 2022-10-23
[2] 논문 DNA extraction and polymerase chain reaction http://www.jcytol.or[...] 2019
[3] 서적 DNA Extraction - an overview {{!}} ScienceDirect Topics https://www.scienced[...] Elsevier Science 2020-10-05
[4] 논문 Development and Optimization of a Silica Column-Based Extraction Protocol for Ancient DNA 2022-04-13
[5] 논문 Evaluation of DNA extraction kits for molecular diagnosis of human Blastocystis subtypes from fecal samples 2011-10
[6] 논문 Comparison of Six Commercial DNA Extraction Kits for Recovery of Cytomegalovirus DNA from Spiked Human Specimens 2000-10
[7] 웹사이트 DNA Extraction https://serc.carleto[...] 2022-10-09
[8] 서적 Forensic DNA Biology
[9] 서적 Forensic DNA typing : biology, technology, and genetics of STR markers Elsevier Academic Press 2005
[10] 논문 A procedure for the isolation of deoxyribonucleic acid from micro-organisms
[11] 논문 A protocol for extraction and purification of high-quality and quantity bacterial DNA applicable for genome sequencing: A modified version of the Marmur procedure
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[13] 논문 Ancient DNA: extraction, characterization, molecular cloning, and enzymatic amplification 1989-03
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[15] 논문 Long term conservation of DNA at ambient temperature. Implications for DNA data storage 2021-11-11
[16] 논문 Appendix S2: DNA extraction method and DNA quality
[17] 논문 Quality control of biotechnology-derived vaccines: technical and regulatory considerations https://www.scienced[...] 2002-11-01
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