집락형성단위
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1. 개요
집락형성단위(CFU, Colony-forming unit)는 특정 조건에서 콜로니를 형성하는 미생물의 수를 추정하는 데 사용되는 단위이다. 이론적으로 하나의 생존 가능한 세포가 콜로니를 형성할 수 있지만, 실제로는 함께 뭉쳐진 세포 덩어리가 콜로니의 조상인 경우가 많다. CFU는 주입 배지법, 도말 배지법, 막 여과법 등 다양한 배양 및 계수 방법을 통해 측정되며, 로그 표기법을 사용하여 농도를 표현하기도 한다. 집락 계수는 수동으로 수행하거나, 소프트웨어 도구 또는 자동화 시스템을 사용하여 수행할 수 있다. 미생물학 외에도 세포 배양 등 다른 분야에서도 사용되며, 최대 가능 수(MPN) 또는 변형 피쉬만 단위(MFU)와 같은 다른 방법으로 대체될 수 있다.
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집락형성단위 | |
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개요 | |
정의 | 콜로니 형성 단위 (Colony-forming unit, CFU)는 미생물학에서 액체나 배양 가능한 고체 배지에서 단일 콜로니를 형성할 수 있는 생존 가능한 박테리아나 곰팡이 세포의 수를 추정하는 데 사용되는 측정값이다. |
설명 | CFU는 살아있는 세포, 세포 클러스터 또는 서로 부착된 세포의 수가 단일 콜로니를 형성할 수 있기 때문에 실제 살아있는 세포 수와 다르다. |
측정 방법 | |
희석 | CFU를 결정하려면 일련의 희석액을 준비하고 각 희석액의 작은 부피를 적절한 고체 배지에 도말한다. |
배양 | 플레이트를 배양한 후, 콜로니 수를 세고 희석 계수를 곱하여 원래 샘플의 CFU/mL 또는 CFU/g을 추정한다. |
계산 | 예를 들어, 10⁻³ 희석액에서 150개의 콜로니를 세었다면 원래 샘플에는 1.5 × 10⁵ CFU/mL이 존재한다. |
활용 | |
응용 | CFU 측정은 식품 안전, 환경 모니터링, 임상 진단 및 제약 제조를 포함한 다양한 분야에서 중요하다. |
중요성 | 미생물 오염 수준을 정량화하고 멸균 또는 살균 공정의 효과를 평가하는 데 도움이 된다. |
추가 정보 | |
주의사항 | CFU는 살아있는 세포의 추정치이며, 배양 조건, 미생물의 종류, 세포의 클러스터링 정도에 따라 달라질 수 있다. |
단위 | CFU/mL (밀리리터당 콜로니 형성 단위), CFU/g (그램당 콜로니 형성 단위) |
2. 이론
평판 계수법의 목적은 온도, 시간, 영양 배지 등 특정 조건에서 콜로니를 생성하는 능력을 바탕으로 존재하는 세포 수를 추정하는 것이다. 이론적으로 하나의 생존 가능한 세포는 복제를 통해 콜로니를 생성할 수 있다. 그러나 단독 세포는 자연에서 예외적이며, 대부분의 경우 콜로니를 만든 세포는 함께 침전된 세포 덩어리이다.[1][2] 또한, 많은 세균은 사슬(예: ''연쇄상구균'') 또는 덩어리(예: ''포도상구균'') 형태로 성장한다. 이러한 이유로 CFU에 의한 미생물 수 추정은 대부분의 경우 샘플에 존재하는 살아있는 세포의 수를 과소평가한다. 이는 CFU 계수가 모든 콜로니가 개별적이며 단일 생존 가능한 미생물 세포에 의해 만들어졌다고 가정하기 때문이다.[3]
평판 계수법은 표준 크기의 페트리 접시에서 30에서 300 CFU 범위의 ''대장균''에 대해 선형이다.[4] 따라서 샘플이 이 범위의 CFU를 생성하도록 하려면 샘플을 희석하고 여러 희석액을 도말해야 한다. 일반적으로 10배 희석액을 사용하며, 희석 계열은 선택된 희석 범위에서 2개 또는 3개의 복제본으로 도말된다. 종종 100 μL이 도말되지만 최대 1 mL까지 더 많은 양이 사용될 수 있다. 더 높은 도말량은 건조 시간을 증가시키지만 추가 희석 단계가 필요할 수 있으므로 종종 더 높은 정확도를 얻지 못한다.[5] CFU/평판은 선형 범위의 평판에서 읽고, 도말된 양과 희석 인수를 고려하여 원래 샘플의 CFU/g (또는 CFU/mL)을 수학적으로 유추한다.
이 방법의 장점은 서로 다른 미생물 종이 서로 뚜렷하게 다른 콜로니를 생성할 수 있다는 것이다. 현미경적 및 거시적으로 모두 그렇다. 콜로니 형태는 존재하는 미생물 식별에 매우 유용할 수 있다.[6]
2. 1. CFU 측정의 한계
평판 계수의 목적은 온도, 시간, 영양 배지 등 특정 조건에서 콜로니를 생성하는 능력을 기반으로 존재하는 세포 수를 추정하는 것이다. 이론적으로 하나의 생존 가능한 세포는 복제를 통해 콜로니를 생성할 수 있다. 그러나 단독 세포는 자연에서 예외적이며, 대부분의 경우 콜로니를 만든 세포는 함께 침전된 세포 덩어리이다.[1][2] 또한, 많은 세균은 사슬(예: ''연쇄상구균'') 또는 덩어리(예: ''포도상구균'') 형태로 성장한다. 이러한 이유로 CFU에 의한 미생물 수 추정은 대부분의 경우 샘플에 존재하는 살아있는 세포의 수를 과소평가한다. 이는 CFU 계수가 모든 콜로니가 개별적이며 단일 생존 가능한 미생물 세포에 의해 만들어졌다고 가정하기 때문이다.[3]평판 배양법은 배양 조건에 따라 특정 미생물만 선택적으로 성장할 수 있다는 한계도 있다. 예를 들어, 사용되는 배지의 종류, 배양 온도, 시간 등에 따라 특정 미생물은 잘 자라지만, 다른 미생물은 성장하지 못할 수 있다.
유기체의 현미경적 구조에 대해 미리 알고 있다면, 관찰된 CFU/mL가 밀리리터당 생존 가능한 세포 수와 어떻게 관련되는지에 대해 더 잘 이해할 수 있다. 경우에 따라 희석을 수행하기 전에 샘플을 볼텍스 믹서로 혼합하여 CFU당 평균 세포 수를 줄일 수도 있다. 그러나 많은 미생물은 섬세하여 볼텍스에 넣으면 생존 가능한 세포의 비율이 감소할 수 있다.[7]
2. 2. 로그 표기법
집락형성단위의 농도는 로그 표기법을 사용하여 표현할 수 있으며, 표시되는 값은 농도의 상용로그이다.[8][9][10] 이렇게 하면 제염 공정의 로그 감소를 간단한 뺄셈으로 계산할 수 있다.3. 측정 방법
집락형성단위는 다음과 같은 여러 미생물 배양 및 계수 방법에서 결과를 정량화하는 데 사용된다.
- 주입 배지법: 시료를 약 40°C~45°C로 냉각된 용융 한천을 사용하여 페트리 접시에 현탁한다(열로 인한 세포 사멸을 최소화하기 위해 응고점 바로 위). 영양 한천이 응고된 후 플레이트를 배양한다.[11]
- 도말 배지법: 시료(소량)를 영양 한천 플레이트 표면에 도말하고 배양하기 전에 건조시킨다.[11]
- 막 여과법: 시료를 막 필터를 통해 여과한 다음 필터를 영양 한천 플레이트 표면에 놓는다. 배양하는 동안 영양분이 필터를 통해 침출되어 성장하는 세포를 지원한다. 대부분의 필터 표면적은 표준 페트리 접시보다 작으므로 플레이트 계수의 선형 범위는 더 작다.[11]
- 마일스 앤드 미스라 방법(드롭 플레이트 방법): 일련의 각 희석액에서 매우 작은 분취량(일반적으로 약 10 마이크로리터)의 시료를 페트리 접시에 떨어뜨린다. 집락이 함께 자라면서 집락형성단위(CFU) 손실을 방지하기 위해 집락이 매우 작을 때 드롭 접시를 읽어야 한다.[12]
그러나 한천 플레이트를 사용해야 하는 기술의 경우, 시료의 순도를 확인할 수 없고 액체에서 세포를 하나씩 셀 수 없기 때문에 액체 용액을 사용할 수 없다.[13]
4. 집락 계수 도구
집락 계수 도구에는 전통적인 수동 계수 방식과 자동화된 계수 시스템이 있다.
전통적으로 집락 계수는 펜과 클릭 카운터를 사용하여 수동으로 수행되었다. 이 방법은 간단하지만, 많은 배양판을 계수해야 할 때는 매우 힘들고 시간이 오래 걸린다.[14][15][16]
이러한 단점을 극복하기 위해 반자동(소프트웨어) 및 자동(하드웨어+소프트웨어) 솔루션이 개발되었다.[14][15][16]
4. 1. 수동 계수
집락을 세는 것은 전통적으로 펜과 클릭 카운터를 사용하여 수동으로 수행된다. 이것은 일반적으로 간단한 작업이지만, 세어야 할 플레이트가 많을 때는 매우 힘들고 시간이 많이 걸릴 수 있다.[14][15][16]
4. 2. 소프트웨어 도구
전통적으로 실험자는 펜과 클릭 카운터를 사용하여 집락 계수를 수동으로 수행해왔으나, 이는 많은 시간이 소요되는 작업이었다.[14][15][16] 이를 개선하기 위해 반자동(소프트웨어) 및 자동(하드웨어 + 소프트웨어) 솔루션이 개발되었다.[14][15][16]소프트웨어 도구를 사용하면 배양 접시 사진에서 집락 수를 계산할 수 있다. 실험자는 계수할 배양 접시의 사진을 찍은 후, 소프트웨어를 이용하여 분석한다. 이 방식은 수동 계수에 비해 시간을 절약해주고, 객관적인 데이터(집락 크기, 색상 등)를 얻을 수 있게 해준다.[16]
다음은 집락 계수에 사용되는 주요 소프트웨어 도구들이다.
소프트웨어 이름 | 설명 | 특징 |
---|---|---|
OpenCFU | C++(C++)와 OpenCV를 기반으로 하는 무료 오픈 소스 프로그램[17] | 사용자 친화적 인터페이스, 다양한 필터 및 제어 기능 제공[17] |
NICE | MATLAB으로 작성된 프로그램[18] | 이미지에서 집락을 쉽게 계산[18] |
ImageJ 및 CellProfiler | ImageJ 매크로/플러그인[19] 및 CellProfiler 파이프라인[20] | 유연하지만, 효율적인 사용을 위해 코드 수정이 필요할 수 있음[19][20] |
이 외에도, 데스크톱 컴퓨터 기반 소프트웨어 외에 안드로이드 및 iOS 기기용 앱을 이용하여 반자동 및 자동 집락 계수를 수행할 수 있다. 스마트폰 카메라로 사진을 찍고, 앱 내부 또는 외부 알고리즘을 통해 집락 수를 추정한다.[21][22][23]
4. 3. 자동화 시스템
자동 집락 계수 시스템은 인적 오류를 줄이고 효율성을 높이기 위해 사용된다. 연구자들이 투과광을 이용하여 세포를 수동으로 계수하는 과정에서 오류가 발생할 가능성이 높기 때문에, 자동화 시스템은 이러한 오류를 줄이는 데 도움을 준다.[24] 특히 세포 수가 적을 때 수동 계수는 농도 계산에 큰 영향을 미칠 수 있다.
일부 생명 공학 제조업체에서는 완전 자동화 시스템을 제공한다.[25][26] 이러한 시스템은 일반적으로 하드웨어와 소프트웨어가 특정 설정을 위해 함께 작동하도록 설계되어 유연성이 떨어지고 가격이 비싸다.[18]
일부 자동 시스템은 나선 도말 방식을 사용한다.[27] MATLAB과 같은 자동화 시스템은 세포를 염색하지 않고도 계수할 수 있게 하여, 집락을 다른 실험에 재사용할 수 있도록 한다. 그러나 이러한 시스템은 먼지나 흠집이 있는 혈액 한천 배지에서 미생물을 구별하기 어렵다는 단점이 있다. 먼지와 흠집은 다양한 모양과 외관을 가질 수 있기 때문이다.[28]
5. 기타 의미
세포 배양 등 일부 분야에서는 CFU라는 단어가 미생물학 외의 의미로 사용된다. 예를 들어, 조혈모세포 연구 분야에서는 CFU가 세포 수의 지표가 아닌, 줄기세포의 종류를 나타내는 데 사용된다.
6. 같이 보기
- 최대 가능 수
- MFU
참조
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논문
Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation
1995
[2]
논문
Measurement of In Situ Activities of Nonphotosynthetic Microorganisms in Aquatic and Terrestrial Habitats
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1985
[3]
서적
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논문
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문서
生化学辞典「コロニー形成単位」
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