폴리아데닐화
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1. 개요
폴리아데닐화는 RNA 분자에 아데닌 염기 서열, 즉 폴리(A) 꼬리를 추가하는 분자 생물학 과정이다. 이 과정은 mRNA의 안정성을 높이고, 핵에서 세포질로의 수송을 돕고, 번역을 촉진하는 등 다양한 기능을 한다. 폴리아데닐화는 진핵생물에서 mRNA의 3' 말단에 일어나는 일반적인 현상이며, 여러 단백질 복합체의 작용으로 조절된다. 또한, 폴리아데닐화는 RNA의 분해를 표시하거나, 대체 폴리아데닐화를 통해 유전자 발현을 조절하는 데에도 관여한다. 폴리아데닐화는 세균, 미토콘드리아, 엽록체 등에서도 발견되며, 생명체의 진화 과정에서 중요한 역할을 해왔다.
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폴리아데닐화 | |
---|---|
개요 | |
정의 | 성숙한 mRNA의 3' 말단에 아데닐산을 추가하는 것 |
설명 | RNA의 3' 말단에 폴리(A) 꼬리를 추가하는 과정이며, 진핵생물에서 mRNA 전구체가 성숙한 mRNA로 변환되는 과정의 일부임. |
진핵생물에서의 역할 | |
mRNA 안정성 | mRNA 안정성과 번역 효율성에 중요한 역할을 함. |
번역 효율성 | 단백질 합성을 촉진함. |
핵 외 수송 | mRNA가 핵에서 세포질로 이동하는 것을 도움. |
mRNA 분해 | 비정상적인 mRNA 분해를 방지함. |
과정 | |
효소 | 폴리(A) 중합효소 (PAP)에 의해 촉매됨. |
ATP 사용 | PAP는 ATP를 사용하여 3' 말단에 아데닌 잔기를 추가함. |
특정 서열 | 진핵생물에서 이 과정은 mRNA의 3' UTR에 있는 특정 서열에 의해 시작됨. |
서열 예시 | 동물: AAUAAA 식물: AU rich elements and U rich elements |
원핵생물에서의 역할 | |
mRNA 분해 | 특정 mRNA의 분해를 촉진하는 역할. |
기타 | |
리보솜 RNA | 일부 조류에서는 리보솜 RNA의 폴리아데닐화가 관찰됨. |
2. 역사적 배경
폴리아데닐화는 1960년 세포 핵 추출물에서 효소가 ATP를 폴리아데닌으로 변환하는 작용을 통해 처음 발견되었다.[100][101] 여러 종류의 세포에서 발견되었지만, 1971년 mRNA에서 폴리(A) 서열이 발견되기 전까지 그 기능은 명확하게 알려지지 않았다.[102][103] 초기에는 이 서열이 RNA의 3' 말단을 뉴클레아제로부터 보호하는 역할만 한다고 생각되었으나, 이후 핵 외부로의 수송 및 번역 과정에서 폴리아데닐화의 구체적인 역할이 밝혀졌다. 폴리아데닐화를 담당하는 중합효소는 1960년대와 1970년대에 걸쳐 정제되고 특성화되었지만, 이 과정을 제어하는 여러 보조 단백질은 1990년대 초에 이르러서야 발견되었다.[102]
RNA는 뉴클레오타이드라고 불리는 개별 구성 요소로 이루어진 큰 생체 분자의 일종이다. RNA 염기 서열은 RNA 분자마다 다르며, A(아데닌), C(시토신), G(구아닌), U(우라실)로 표시된다. RNA는 DNA 주형에서 전사되며, 5' 말단에서 3' 말단 방향으로 표기된다. 3' 말단은 폴리(A) 꼬리가 발견되는 곳이다.[6][7][8]
핵 내 폴리아데닐화는 전사가 끝날 때 RNA에 폴리(A) 꼬리를 추가하는 과정이다. 이 과정은 다중 단백질 복합체(CPSF, CstF, CFI, CFII, PAP, PABII 등)에 의해 이루어진다.[17] 이 복합체는 RNA 중합효소 II에 의해 만들어지는 전구 mRNA와 같은 RNA 산물의 3' 말단을 절단하고, 아데노신 삼인산에서 아데노신 일인산 단위를 RNA에 첨가하여 폴리(A) 꼬리를 만든다.[17][31]
3. RNA 배경지식
전령 RNA(mRNA)는 번역을 통해 단백질 합성을 위한 주형이 되는 코딩 영역을 가지며, 나머지 비번역 영역은 mRNA 활성을 조절한다.[9] 비번역 영역 외에도 번역되지 않는 비부호화 RNA(ncRNA)도 많이 존재하며, 이들 중 많은 부분이 조절 역할을 한다.[10]
4. 핵 내 폴리아데닐화
절단은 CPSF에 의해 촉매되며,[12][17] RNA의 폴리아데닐화 신호 서열(AAUAAA)에서 10~30 뉴클레오타이드 하류 지점에서 발생한다.[18] CstF는 CPSF 결합 부위 하류의 GU가 풍부한 영역에 결합하며,[20] CFI는 포유류의 경우 UGUAA 서열을 포함한 다른 부위를 인식하여 AAUAAA 서열이 없더라도 CPSF를 불러올 수 있다.[24][25]
RNA가 절단되면, 폴리아데닐산 중합효소가 폴리아데닐화를 시작한다.[31] PAB2 단백질은 짧은 폴리(A) 꼬리에 결합하여 폴리아데닐산 중합효소의 RNA에 대한 친화력을 높인다. 폴리(A) 꼬리가 약 250 뉴클레오타이드 길이가 되면, 폴리아데닐화가 중단된다.[32][33] CPSF는 RNA 중합효소 II와 접촉하여 전사 종결 신호를 보낸다.[34][35]
4. 1. 기능
mRNA의 경우, 폴리(A) 꼬리는 세포질에서 mRNA 분자를 효소적 분해로부터 보호하고, 전사 종결, 핵으로부터 mRNA의 수송, 그리고 번역을 돕는다.[1] 거의 모든 진핵세포 mRNA가 폴리아데닐화되지만,[11] 동물 복제 의존성 히스톤 mRNA는 예외이다.[12] 이들은 폴리(A) 꼬리가 없고, 대신 줄기-고리 구조로 끝나고 그 뒤에 히스톤 하위 요소라고 불리는 퓨린이 풍부한 서열이 있어 RNA가 잘리는 위치를 지정하여 히스톤 mRNA의 3' 말단을 형성되도록 한다.[13]
많은 진핵세포 비코딩 RNA는 전사 종료 시 항상 폴리아데닐화된다. 마이크로 RNA처럼, 폴리(A) 꼬리가 중간 형태에서만 보이고 가공 과정에서 말단이 제거되어 성숙한 RNA에서는 보이지 않는 작은 RNA가 있다.[14][15] 그러나 X 염색체 불활성화를 매개하는 RNA인 Xist를 포함하는, 많은 긴 비암호 RNA의 경우, 폴리(A) 꼬리는 성숙한 RNA의 일부이다.[16]
4. 2. 기작
RNA 중합효소 II에 의해 만들어지는 전구 mRNA와 같은 RNA 산물에 작용하는 진핵생물 핵 내의 공정성 폴리아데닐화 복합체는 다중 단백질 복합체(CPSF, CstF, CFI, CFII, PAP, PABII 등)로 구성되어 있다.[17] 이 복합체는 새로 생성된 RNA의 3' 말단을 절단하고, 이 절단된 말단에 폴리아데닐화를 수행한다. 절단은 CPSF에 의해 촉매되며,[12][17] RNA의 '''폴리아데닐화 신호''' 서열(AAUAAA)에서 10~30 뉴클레오타이드 하류 지점에서 발생한다.[18] CPSF는 AAUAAA 서열에 결합하지만, 이 서열에 변형이 존재하여 CPSF에 더 약하게 결합하는 경우도 있다.[17][19]
CstF와 CFI는 RNA 결합에 특이성을 더하는 단백질이다. CstF는 CPSF 결합 부위 하류의 GU가 풍부한 영역에 결합하며,[20] CFI는 포유류의 경우 UGUAA 서열을 포함한 다른 부위를 인식하여 AAUAAA 서열이 없더라도 CPSF를 불러올 수 있다.[24][25] 폴리아데닐화 신호 서열은 진핵생물 그룹 간에 차이가 있는데, 식물과 곰팡이에서는 AAUAAA 서열이 덜 일반적이다.[26]
RNA는 일반적으로 CstF가 RNA 중합효소 II에 결합하기 때문에 전사 종결 전에 절단된다.[27] 절단은 CFII 단백질도 포함하지만, 자세한 메커니즘은 알려져 있지 않다.[29] 폴리아데닐화 신호와 관련된 절단 부위는 최대 약 50 뉴클레오타이드까지 달라질 수 있다.[30]
RNA가 절단되면, 폴리아데닐산 중합효소에 의해 폴리아데닐화가 시작된다. 폴리아데닐산 중합효소는 아데노신 삼인산에서 아데노신 일인산 단위를 RNA에 첨가하여 피로인산을 절단하는 방식으로 poly(A) 꼬리를 만든다.[31] PAB2 단백질은 짧은 poly(A) 꼬리에 결합하여 폴리아데닐산 중합효소의 RNA에 대한 친화력을 높인다. poly(A) 꼬리가 약 250 뉴클레오타이드 길이가 되면, 폴리아데닐산 중합효소는 더 이상 CPSF에 결합할 수 없어 폴리아데닐화가 중단되고, 이를 통해 poly(A) 꼬리의 길이가 결정된다.[32][33] CPSF는 RNA 중합효소 II와 접촉하여 전사 종결 신호를 보낸다.[34][35] 폴리아데닐화 기작은 인트론을 제거하는 스플라이소솜과 물리적으로 연결되어 있다.[25]
4. 3. 하류 효과
폴리(A) 꼬리는 폴리(A) 결합 단백질의 결합 부위로 작용한다. 폴리(A) 결합 단백질은 핵으로부터의 수송과 번역을 촉진하고 분해를 억제한다.[37] 이 단백질은 mRNA가 핵에서 수송되기 전에 폴리(A) 꼬리에 결합하며, 효모에서는 폴리(A) 꼬리를 짧게 하여 mRNA 수송을 가능하게 하는 효소인 폴리(A) 뉴클레아제를 모집한다. 폴리(A) 결합 단백질은 RNA와 함께 세포질로 수송된다. 수송되지 않은 mRNA는 엑소솜 복합체에 의해 분해된다.[38][39] 폴리(A) 결합 단백질은 번역에 영향을 미치는 여러 단백질을 모집할 수 있으며,[38] 이 중 하나는 개시 인자-4G로, 40S 리보솜 소단위를 모집한다.[40] 모든 mRNA의 번역에 폴리(A) 꼬리가 필요한 것은 아니다.[41] 폴리(A) 꼬리화(올리고 아데닐화)는 일반적으로 폴리(A) 꼬리가 없는 RNA 분자(예: 작은 비암호화 (sn)RNA 등)의 운명을 결정하여 RNA 분해를 유도할 수 있다.[42]
5. 탈아데닐화
진핵생물 체세포에서, 세포질 내 대부분의 mRNA는 폴리(A) 꼬리가 점차 짧아진다. 폴리(A) 꼬리가 짧은 mRNA는 번역이 덜 되고 더 빨리 분해된다.[43] mRNA가 분해되기까지 여러 시간이 걸릴 수 있다.[44] 이러한 탈아데닐화 및 분해 과정은 mRNA의 3′ 비번역 영역에 상보적인 miRNA에 의해 가속화될 수 있다.[45] 미성숙 난자에서, 짧아진 폴리(A) 꼬리를 가진 mRNA는 분해되지 않고 저장되어 번역적으로 비활성화된다. 이 짧은 꼬리를 가진 mRNA는 수정 후 난자 활성화 동안 세포질 폴리아데닐화에 의해 활성화된다.[46]
동물에서, 폴리(A) 리보핵산가수분해효소(PARN)는 5′ 캡에 결합하여 폴리(A) 꼬리에서 뉴클레오타이드를 제거할 수 있다. mRNA가 얼마나 빨리 분해되는지를 제어하는 데 5′ 캡과 폴리(A) 꼬리에 대한 접근 정도가 중요하다. RNA가 개시 인자 4E(eIF4E)(5′ 캡에서)와 4G(eIF4G)(폴리(A) 꼬리에서)에 의해 결합되면 PARN의 탈아데닐화가 덜 일어나며, 이것이 번역이 탈아데닐화를 감소시키는 이유이다. 탈아데닐화 속도는 RNA 결합 단백질에 의해서도 조절될 수 있다. RNA 삼중 나선 구조와 폴리(A) 꼬리 3' 말단 결합 포켓과 같은 RNA 모티프는 탈아데닐화 과정을 지연시키고 폴리(A) 꼬리 제거를 억제한다.[47] 폴리(A) 꼬리가 제거되면, 디캡핑 복합체가 5′ 캡을 제거하여 RNA의 분해를 유도한다. 출아 효모와 인간 세포에서 탈아데닐화에 관여하는 몇몇 다른 단백질들이 있으며, 특히 CCR4-Not 복합체가 두드러진다.[48]
6. 세포질 폴리아데닐화
일부 동물 세포 유형, 즉 생식 세포, 초기 배아 발생 동안, 그리고 신경 세포의 시냅스 후 부위에서 세포질 내 폴리아데닐화가 일어난다. 이것은 짧아진 poly(A) 꼬리를 가진 mRNA의 poly(A) 꼬리를 늘려 mRNA가 번역되도록 한다.[43][49] 이러한 짧아진 poly(A) 꼬리는 종종 20 뉴클레오티드 미만이며, 약 80-150 뉴클레오티드까지 길어진다.[50]
초기 생쥐 배아에서, 난자 세포의 모성 RNA의 세포질 내 폴리아데닐화는 전사가 2세포기 중간(인간의 경우 4세포기)까지 시작되지 않더라도 세포가 생존하고 성장할 수 있게 한다.[51][52] 뇌에서 세포질 내 폴리아데닐화는 학습 중에 활성화되며, 신경 자극에 대한 반응으로 한 신경 세포에서 다른 신경 세포로의 신호 전달을 강화하는 장기 기억 증강에 역할을 할 수 있으며, 학습과 기억 형성에 중요하다.[50][53]
세포질 내 폴리아데닐화는 RNA 결합 단백질인 CPSF와 CPEB를 필요로 하며, Pumilio와 같은 다른 RNA 결합 단백질을 포함할 수 있다.[54] 세포 유형에 따라, 중합 효소는 핵 과정에 사용되는 것과 동일한 유형의 폴리아데닐산 중합 효소(PAP)일 수 있으며, 세포질 중합 효소 GLD-2일 수도 있다.[55]
7. 대체 폴리아데닐화
많은 단백질 코딩 유전자들은 하나 이상의 폴리아데닐화 부위를 가지고 있어서, 하나의 유전자가 3′ 말단이 다른 여러 개의 mRNA를 암호화할 수 있다.[26][56][57] 전사체의 3' 영역은 많은 폴리아데닐화 신호(PAS)를 포함한다. 더 5' 말단에 가까운 PAS 부위가 사용되면, 전사체의 3' 비번역 영역(3' UTR)의 길이가 짧아진다.[58] 인간과 초파리 연구 모두 조직 특이적 대체 폴리아데닐화(APA)를 보였다. 신경 조직은 원위 PAS 사용을 선호하여 더 긴 3' UTR을 생성하고, 고환 조직은 근위 PAS를 선호하여 더 짧은 3' UTR을 생성한다.[59][60] 유전자의 보존 정도와 대체 폴리아데닐화 경향 사이에 상관관계가 있으며, 보존성이 높은 유전자가 더 많은 APA를 나타낸다는 연구 결과가 있다. 유사하게, 발현이 높은 유전자도 이러한 패턴을 따른다.[61] 리보솜 프로파일링 데이터(리보솜 내부의 mRNA만 시퀀싱)는 짧은 3' UTR을 가진 mRNA 이소형이 번역될 가능성이 더 높다는 것을 보여주었다.[58]
대체 폴리아데닐화는 3' UTR의 길이를 변화시키기 때문에,[62] 3' UTR에서 마이크로RNA에 사용할 수 있는 결합 부위도 변경할 수 있다.[18][63] 마이크로RNA는 결합하는 mRNA의 번역을 억제하고 분해를 촉진하는 경향이 있지만, 전사체를 안정화시키는 마이크로RNA의 예도 있다.[64][65] 대체 폴리아데닐화는 또한 코딩 영역을 짧게 만들어 mRNA가 다른 단백질을 암호화하게 할 수 있지만,[66][67] 이는 3' 비번역 영역을 짧게 하는 것보다 훨씬 드물다.[26]
폴리(A) 부위의 선택은 세포 외 자극에 의해 영향을 받을 수 있으며 폴리아데닐화에 관여하는 단백질의 발현에 따라 달라진다.[68][69] 예를 들어, 절단 자극 인자 (CstF)의 서브유닛인 CstF-64의 발현은 대식세포에서 지질다당류 (면역 반응을 유발하는 일련의 박테리아 화합물)에 반응하여 증가한다. 이로 인해 약한 폴리(A) 부위가 선택되어 전사체가 짧아진다. 이는 리소짐 및 TNF-α와 같은 방어 관련 제품에 대한 mRNA의 3' 비번역 영역에서 조절 요소를 제거한다. 이러한 mRNA는 더 긴 반감기를 가지며 이러한 단백질을 더 많이 생성한다.[68] 폴리아데닐화 기계의 단백질 외에도 RNA 결합 단백질도 폴리아데닐화 부위의 사용 여부에 영향을 미칠 수 있으며,[70][71][72][73] 폴리아데닐화 신호 근처의 DNA 메틸화도 영향을 미칠 수 있다.[74] 또한, 전사, 스플라이싱 또는 RNA 생물학을 조절하는 다른 메커니즘에 관여하는 수많은 다른 구성 요소가 대체 폴리아데닐화(APA)에 영향을 미칠 수 있다.[75]
8. 진핵생물에서 분해를 위한 표지
tRNA, rRNA, snRNA, snoRNA 등 많은 비부호화 RNA에서 폴리아데닐화는, 적어도 효모에서는, RNA를 분해하도록 표시하는 방법이다.[76] 이러한 폴리아데닐화는 핵 내에서 TRAMP 복합체에 의해 수행되며, TRAMP 복합체는 3' 말단에 약 4개 뉴클레오타이드 길이의 꼬리를 유지한다.[77][78] 그런 다음 RNA는 엑소좀에 의해 분해된다.[79] 폴리(A) 꼬리는 인간 rRNA 조각에서도 발견되었으며, 동종 중합체(A만) 형태와 이종 중합체(대부분 A) 꼬리 형태 모두에서 발견된다.[80]
9. 원핵생물 및 세포 소기관에서의 폴리아데닐화
많은 세균에서 mRNA와 비부호화 RNA 모두 폴리아데닐화될 수 있다. 이 폴리(A) 꼬리는 폴리뉴클레오티드 인산화효소(PNPase)와 RNase E를 포함하는 데그라도솜에 의한 분해를 촉진한다. 폴리뉴클레오티드 인산화효소는 RNA의 3' 말단에 결합하며, 폴리(A) 꼬리가 제공하는 3' 연장은 2차 구조에 의해 3' 말단이 막히는 RNA에 결합할 수 있게 한다. 폴리뉴클레오티드 인산화효소에 의한 3' 말단의 반복적인 폴리아데닐화 및 분해는 데그라도솜이 이러한 2차 구조를 극복하도록 돕는다. 폴리(A) 꼬리는 또한 RNA를 둘로 자르는 RNase를 모집할 수 있다.[81] 이러한 세균의 폴리(A) 꼬리는 약 30개의 뉴클레오티드 길이이다.[82]
동물과 트리파노소마와 같은 다양한 그룹에서, 미토콘드리아는 안정화 및 불안정화 폴리(A) 꼬리를 모두 포함한다. 불안정화 폴리아데닐화는 mRNA와 비암호화 RNA를 모두 표적으로 한다. 폴리(A) 꼬리는 평균 43개의 뉴클레오티드 길이이다. 안정화 꼬리는 종결 코돈에서 시작하며, 그것이 없으면 종결 코돈(UAA)은 완전하지 않다. 왜냐하면 게놈은 U 또는 UA 부분만 암호화하기 때문이다. 식물 미토콘드리아는 불안정화 폴리아데닐화만 가지고 있다. 미토콘드리아 폴리아데닐화는 출아 또는 분열 효모에서 관찰된 적이 없다.[83][84]
많은 세균과 미토콘드리아가 폴리아데닐산 중합효소를 가지고 있지만, 폴리뉴클레오티드 인산화효소 자체에 의해 수행되는 또 다른 유형의 폴리아데닐화도 가지고 있다. 이 효소는 세균,[85] 미토콘드리아,[86] 엽록체[87] 및 엑소솜을 가진 고세균에서[88] 발견된다. 그것은 아데닌이 대부분인 3' 연장을 합성할 수 있다. 세균에서와 마찬가지로, 폴리뉴클레오티드 인산화효소에 의한 폴리아데닐화는 엽록체[89]와 아마도 고세균에서도 RNA의 분해를 촉진한다.[83]
10. 진화
폴리아데닐화는 거의 모든 생물체에서 관찰되지만, 보편적인 것은 아니다.[5][90] 그러나, 이러한 변형이 광범위하게 분포하고 모든 세 생명체 분류군의 생물체에서 발견된다는 사실은, 모든 생명체의 최후 보편 공통 조상이 어떤 형태의 폴리아데닐화 시스템을 가지고 있었을 것으로 추정하게 한다.[82] 일부 생물체는 mRNA를 폴리아데닐화하지 않는데, 이는 진화 과정에서 폴리아데닐화 기구를 잃었음을 의미한다. 폴리아데닐화가 없는 진핵생물의 예는 알려져 있지 않지만, 세균 ''Mycoplasma gallisepticum''과 내염성 고세균 ''Haloferax volcanii''의 mRNA는 이러한 변형이 없다.[91][92]
가장 오래된 폴리아데닐화 효소는 폴리뉴클레오티드 인산화 효소이다. 이 효소는 세균의 데그라도시움과 고세균의 엑소좀의 구성 요소이며,[93] 이 두 복합체는 RNA를 뉴클레오티드로 재활용하는 밀접하게 관련된 복합체이다. 이 효소는 3′-가장자리 뉴클레오티드 사이의 결합을 인산으로 공격하여 RNA를 분해하고, 이인산 뉴클레오티드를 분리한다. 이 반응은 가역적이므로, 효소는 더 많은 뉴클레오티드로 RNA를 확장할 수도 있다. 폴리뉴클레오티드 인산화 효소에 의해 추가된 이종 중합체 꼬리는 아데닌이 매우 풍부하다. 아데닌을 선택하는 것은, ATP를 에너지 통화로 사용한 결과 다른 뉴클레오티드보다 ADP 농도가 더 높기 때문에, 초기 생명체에서 이 꼬리에 포함될 가능성이 더 높기 때문일 것이다. 아데닌이 풍부한 꼬리가 RNA 분해에 관여한 것이 나중에 폴리아데닐산 중합 효소(다른 뉴클레오티드 없이 폴리(A) 꼬리를 생성하는 효소)의 진화를 촉진했다는 주장이 제기되었다.[94]
폴리아데닐산 중합 효소는 그렇게 오래되지 않았다. 이들은 세균과 진핵생물 모두에서 CCA-첨가 효소로부터 별도로 진화했는데, 이 효소는 tRNA의 3′ 말단을 완성하는 효소이다. 이 효소의 촉매 도메인은 다른 중합 효소와 상동성을 갖는다.[79] 세균 CCA-첨가 효소가 진핵생물로의 수평 전달을 통해 고세균과 유사한 CCA-첨가 효소가 폴리(A) 중합 효소로 기능을 전환할 수 있게 된 것으로 추정된다.[82] 고세균과 시아노박테리아와 같은 일부 계통은 폴리아데닐산 중합 효소를 전혀 진화시키지 못했다.[94]
11. 긍정적 및 부정적 조절
mRNA의 폴리(A) 꼬리 길이를 조절하는 것은 전사 후 단계에서 유전자 발현을 제어하는 효과적인 수단이다. 발생 초기에는 전사가 억제되어 있으며, 유전자 발현은 주로 세포질 폴리아데닐화에 의해 제어된다.[184]
체세포에서는 탈아데닐화에 의한 음성 조절 메커니즘이 상당히 많이 연구되었다. 그러나 폴리(A) 꼬리의 신장에 의한 양성 조절에 대해서는, 관찰된 길이 증가가 새로운 mRNA 합성 때문인지, 탈아데닐화 감소 때문인지, 또는 세포질 폴리아데닐화 때문인지 구별하기 어려워, 연구가 많이 이루어지지 않았다. 이 때문에 탈아데닐화 효소가 억제된 조건에서 전사 펄스 체이스 분석을 수행하는 방법 등이 개발되었다.[184]
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Wispy, the Drosophila homolog of GLD-2, is required during oogenesis and egg activation
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Proliferating cells express mRNAs with shortened 3′ untranslated regions and fewer microRNA target sites
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Widespread mRNA polyadenylation events in introns indicate dynamic interplay between polyadenylation and splicing
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The STAR protein QKI-7 recruits PAPD4 to regulate post-transcriptional polyadenylation of target mRNAs
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Mechanism and regulation of mRNA polyadenylation
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Progress in Nucleic Acid Research and Molecular Biology Volume 71
[188]
논문
Polyadenylic Acid Sequences in the Heterogeneous Nuclear RNA and Rapidly-Labeled Polyribosomal RNA of HeLa cells: Possible Evidence for a Precursor Relationship
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