엽록소
"오늘의AI위키"의 AI를 통해 더욱 풍부하고 폭넓은 지식 경험을 누리세요.
1. 개요
엽록소는 식물이 광합성을 통해 빛 에너지를 흡수하는 데 필수적인 녹색 색소이다. 1817년에 처음 분리 및 명명되었으며, 1906년 엽록소 내 마그네슘 존재가 밝혀졌다. 이후 엽록소 a의 구조 규명과 합성에 대한 연구가 진행되었고, 2010년에는 엽록소 f가 남세균 등에도 존재함이 밝혀졌다. 엽록소는 광합성 과정에서 빛을 흡수하고, 에너지를 전달하며, 전하 분리를 통해 생합성에 필요한 물질을 생성하는 역할을 한다. 엽록소는 여러 종류가 있으며, 각기 다른 화학 구조를 가지고 있다. 엽록소는 요리, 식품 첨가물, 영양 보충제 등 다양한 분야에서 활용되며, 식물의 노화 과정과 엽록소의 분해, 엽록소 함량 측정, 생합성 등에 대한 연구가 이루어지고 있다.
더 읽어볼만한 페이지
- 광합성 색소 - 카로티노이드
카로티노이드는 40개의 탄소 원자를 가진 테트라테르페노이드 색소로, 폴리엔 탄화수소 사슬 형태를 띠며, 사슬 끝에 고리 구조나 산소 원자가 결합될 수 있고, 친유성이며 광합성, 항산화 작용 등 생리 활성을 가지며 식물, 동물, 미생물 등에서 발견된다. - 광합성 색소 - 레티날
레티날은 카로티노이드에서 생성되는 비타민 A의 한 형태로, 레티놀 및 레티노산과 상호 전환되며 시각 과정에서 옵신 단백질과 결합하여 광자 에너지를 신경 신호로 변환하는 중요한 역할을 하고 일부 미생물 옵신에서도 발견된다. - 테트라피롤 - 헴 C
헴 C는 헴 B의 비닐기 곁사슬이 티오에테르 결합으로 아포단백질에 연결된 형태로, 사이토크롬 c에 주로 존재하며 전자 운반체로서 다양한 생물체에서 발견되고 산화환원전위가 조절될 수 있으며 세포 자멸사에도 관여한다. - 테트라피롤 - 엽록소 a
엽록소 a는 대부분의 광합성 생물에서 화학 에너지를 방출하는 데 필수적인 클로린 고리 구조의 색소 분자이며, 특정 파장의 빛을 흡수하고 녹색 빛을 반사하며, 식물성 플랑크톤 생물량의 지표로도 활용된다. - E 번호 첨가제 - 인산
인산은 화학식 H₃PO₄를 가지며, 인광석을 이용한 습식 또는 건식 공정으로 생산되어 비료, 식품 첨가물, 세제, 의약품, 금속 처리 등 다양한 산업 분야에 사용되는 인 화합물이다. - E 번호 첨가제 - 프로피온산
프로피온산은 화학식 CH3CH2COOH를 가지는 카복실산으로, 개미산과 아세트산의 중간적인 물리적 특성을 가지며, 식품 및 사료의 방부제, 화학 물질 생산의 중간체, 의약품 및 살충제 제조 등 다양한 용도로 사용되는 지방산 및 아미노산 대사의 중간 생성물이다.
엽록소 - [화학 물질]에 관한 문서 | |
---|---|
엽록소 정보 | |
![]() | |
![]() | |
![]() | |
![]() | |
일반 정보 | |
어원 | 그리스어 χλωρός (khlōrós, "연두색" 또는 "녹색") 그리스어 φύλλον (phýllon, "잎") |
화학 정보 | |
CAS 등록번호 | 1406-65-1 |
CAS 등록번호 (a) | 479-61-8 |
CAS 등록번호 (b) | 519-62-0 |
KEGG | C01793 |
KEGG (a) | C05306 |
KEGG (b) | C05307 |
분자식 | chem:C55H70O6N4Mg |
약리학 정보 | |
법적 분류 | 성분 본질(원재료)로는 의약품이 아닌 것 |
특징 | |
기능 | 식물, 조류, 세균에서 발견되는 녹색 색소 |
역할 | 광합성 작용 |
흡수 파장 | 주로 청색광과 적색광 흡수 |
반사 파장 | 녹색광 반사 |
분포 | 엽록체 내 존재 |
종류 | 엽록소 a, 엽록소 b, 엽록소 c, 엽록소 d, 엽록소 f 등 |
2. 역사
엽록소는 1817년에 조제프 비에나미에 카방투와 피에르 조제프 펠레티에가 처음으로 분리하고 명명하였다.[65] 엽록소에 마그네슘이 존재한다는 사실은 1906년에 발견되었으며,[66] 이는 식물체의 살아 있는 조직에서 해당 원소를 처음으로 발견한 것이다.[67]
1905년부터 1915년까지 독일의 화학자 리하르트 빌슈테터가 초기 연구를 수행하였다. 1940년에 한스 피셔가 엽록소 ''a''의 일반 구조를 밝혀냈고, 1960년에 엽록소 ''a''의 입체화학이 대부분 알려지자 로버트 번스 우드워드는 이 분자의 전체 합성 과정을 발표했다.[67][68] 1967년에는 이언 플레밍이 마지막으로 남은 입체화학적 설명을 완료했으며,[69] 1990년에는 우드워드와 공동 저자들이 새로이 갱신된 합성 과정을 발표했다.[70] 2010년에는 엽록소 ''f''가 스트로마톨라이트를 형성하는 남세균 및 다른 산소 발생 광합성 미생물에도 존재한다는 사실을 연구자들이 발표했다.[71][72] C55H70O6N4Mg의 분자식과 (2-폼일)-엽록소의 구조는 핵자기 공명(NMR), 광학 스펙트럼 및 질량 스펙트럼을 기반으로 추론한 것이다.[73]
2. 1. 엽록소의 발견과 초기 연구
조제프 비에나미에 카방투와 피에르 조제프 펠레티에는 1817년에 엽록소를 처음으로 분리하고 명명하였다.[65] 1906년에는 엽록소에 마그네슘이 존재한다는 사실이 발견되었는데,[66] 이는 식물체의 살아 있는 조직에서 해당 원소를 처음으로 발견한 것이다.[67]1905년부터 1915년까지 독일의 화학자 리하르트 빌슈테터가 초기 연구를 수행하였다. 그 후, 1940년에 한스 피셔가 엽록소 ''a''의 일반 구조를 밝혀냈다. 1960년에 엽록소 ''a''의 입체화학이 대부분 알려지자 로버트 번스 우드워드는 이 분자의 전체 합성 과정을 발표했다.[67][68] 1967년에 마지막으로 남은 입체화학적 설명을 이언 플레밍이 완료했으며,[69] 1990년에는 우드워드와 공동 저자들이 새로이 갱신된 합성 과정을 발표했다.[70] 2010년에는 엽록소 ''f''가 스트로마톨라이트를 형성하는 남세균 및 다른 산소 발생 광합성 미생물에도 존재한다는 사실을 연구자들이 발표했다.[71][72] C55H70O6N4Mg의 분자식과 (2-폼일)-엽록소의 구조는 핵자기 공명(NMR), 광학 스펙트럼 및 질량 스펙트럼을 기반으로 추론한 것이다.[73]
2. 2. 엽록소 구조와 합성 연구
엽록소는 1817년에 조제프 비에나미에 카방투와 피에르 조제프 펠레티에가 처음으로 분리하고 명명하였다.[65][6] 엽록소에 마그네슘이 존재한다는 사실은 1906년에 발견되었으며,[66][7] 이는 식물체의 살아 있는 조직에서 해당 원소를 처음으로 발견한 것이다.[67][8]1905년부터 1915년까지 독일의 화학자 리하르트 빌슈테터가 초기 연구를 이뤄낸 후, 1940년에 한스 피셔가 엽록소 ''a''의 일반 구조를 밝혀냈다. 1960년에 엽록소 ''a''의 입체화학이 대부분 알려지자 로버트 번스 우드워드는 이 분자의 전체 합성 과정을 발표했다.[67][68][8][9] 1967년에 마지막으로 남은 입체화학적 설명을 이언 플레밍이 완료시켰으며,[69][10] 1990년에 우드워드와 공동 저자들은 새로이 갱신된 합성과정을 발표했다.[70][11] 2010년에는 엽록소 ''f''가 스트로마톨라이트를 형성하는 남세균 및 다른 산소발생 광합성 미생물에도 존재한다는 사실을 연구자들이 발표했다.[71][72][12][13] C55H70O6N4Mg의 분자식과 (2-포르밀)-엽록소 ''a''의 구조는 핵자기 공명(NMR), 광학 스펙트럼 및 질량 스펙트럼을 기반으로 추론한 것이다.[73][14]
3. 광합성
엽록소는 식물이 빛으로부터 에너지를 흡수하여 광합성을 할 수 있도록 돕는 필수적인 역할을 한다.[74]
엽록소 분자는 엽록체의 틸라코이드 막에 내장된 광계 내부와 주변에 배열되어 있다.[75] 엽록소는 빛을 흡수하고, 흡수된 빛 에너지를 공명 에너지 전달을 통해 광계의 반응 중심에 있는 특정 엽록소 쌍으로 전달하며, 전하 분리를 통해 생합성을 추진하는 세 가지 기능을 수행한다.
광계 I과 광계 II는 현재 인정되는 두 가지 광계이며, 각각 P700과 P680이라는 고유한 반응 중심 색소를 가지고 있다. 각 광계에 있는 엽록소 종류의 동일성, 기능, 스펙트럼 특성은 서로 다르며, 이를 둘러싸고 있는 단백질의 구조에 의해 결정된다.
엽록소 반응 중심의 기능은 빛 에너지를 흡수하여 광계의 다른 부분으로 전달하는 것이다. 흡수된 에너지는 전자를 통해 전달되며, 전자를 제거하는 것은 산화 반응이다. 엽록소는 전자전달계라고 불리는 일련의 분자 중간생성물로 고에너지 전자를 전달한다. 엽록소의 하전된 반응 중심(P680+)은 물에서 전자를 받아 다시 바닥 상태로 환원된다. 이 전자는 물이 산소와 수소 이온으로 산화되는 과정에서 얻어진다. 이 반응은 광합성 생물이 산소를 생성하는 방식이며, 지구 대기의 거의 모든 산소의 원천이다. 광계 I은 일반적으로 광계 II에 이어서 직렬로 작동하며, 광계 I의 P700+는 전자를 받아들이고 궁극적으로 광계 II로부터 나오는 전자에 의해 환원된다.
반응 중심의 엽록소 색소에 의해 생성된 전자 흐름은 양성자 구동력을 형성한다. 이는 ATP 생성 또는 NADP+를 NADPH로 환원시키는 데 사용된다. NADPH는 CO2를 당으로 환원시키는 반응이나 다른 생합성 반응에 사용되는 보편적인 물질이다.
반응 중심의 엽록소-단백질 복합체는 빛을 간접적으로 흡수하고 전하 분리 현상을 수행할 수 있지만, 주어진 빛 강도 하에서 그러한 일이 일어날 확률은 작다. 따라서 광계의 다른 엽록소와 안테나 색소 단백질은 모두 협력하여 빛 에너지를 흡수하여 반응 중심으로 보낸다. 엽록소 ''a'' 외에도 보조 색소라고 하는 다른 색소들이 있다.
3. 1. 광합성에서의 엽록소의 역할
엽록소는 광합성에 필수적인 요소로, 식물이 빛 에너지를 흡수하는 데 중요한 역할을 한다.[74] 엽록소 분자는 엽록체의 틸라코이드 막에 있는 광계 내부와 주변에 배열되어 있다.[75] 광계에서 엽록소는 세 가지 주요 기능을 수행한다.# 빛 흡수: 대부분의 엽록소 분자(광계당 최대 수백 개)는 빛을 흡수한다.
# 에너지 전달: 흡수된 빛 에너지는 공명 에너지 전달을 통해 광계의 반응 중심에 있는 특정 엽록소 쌍으로 전달된다.
# 전하 분리: 반응 중심의 특정 엽록소 쌍은 전하 분리를 일으켜 결합되지 않은 양성자(H+)와 전자(e-)를 생성하여 생합성 반응을 일으킨다.
광계 I과 광계 II는 현재 인정되는 두 가지 광계이며, 각각 P700과 P680이라는 고유한 반응 중심 색소를 가지고 있다. 이 명칭은 각 반응 중심 색소가 가장 잘 흡수하는 적색광 파장(나노미터 단위)을 따른 것이다. 각 광계에 있는 엽록소의 종류, 기능, 스펙트럼 특성은 서로 다르며, 이를 둘러싸고 있는 단백질 구조에 의해 결정된다.
엽록소 반응 중심의 기능은 빛 에너지를 흡수하여 광계의 다른 부분으로 에너지를 전달하는 것이다. 흡수된 광자 에너지는 전하 분리 과정을 통해 전자로 전달된다. 엽록소에서 전자가 제거되는 것은 산화 반응이다. 엽록소는 전자전달계라 불리는 일련의 분자 중간체에 고에너지 전자를 제공한다. 엽록소의 하전된 반응 중심(P680+)은 물에서 추출한 전자를 받아들여 바닥 상태로 돌아간다. P680+을 환원시키는 전자는 궁극적으로 여러 중간체를 거쳐 물(H2O)이 산소(O2)와 수소 이온(H+)으로 산화되는 과정에서 얻어진다. 이 반응은 식물과 같은 광합성 생물이 산소를 생성하는 방식이며, 지구 대기의 거의 모든 산소의 원천이다. 광계 I은 일반적으로 광계 II에 이어 직렬로 작동한다. 따라서 광계 I의 P700+는 일반적으로 틸라코이드 막의 많은 중간체를 통해 전자를 받아들이고, 궁극적으로 광계 II에서 나오는 전자에 의해 환원된다. 그러나 틸라코이드 막의 전자 전달 반응은 복잡하며, P700+를 환원시키는 데 사용되는 전자원은 다양할 수 있다.
반응 중심의 엽록소 색소에 의해 생성된 전자 흐름은 틸라코이드 막을 가로질러 H+ 이온을 펌핑하는 데 사용되며, 이는 주로 ATP(저장된 화학 에너지) 생성 또는 NADP+를 NADPH로 환원시키는 데 사용되는 화학삼투적 위치 에너지인 양성자 구동력을 형성한다. NADPH는 이산화탄소(CO2)를 당으로 환원시키는 반응이나 다른 생합성 반응에 사용되는 보편적인 물질이다.
반응 중심의 엽록소-단백질 복합체는 빛을 직접 흡수하고 다른 엽록소 색소의 도움 없이 전하 분리 현상을 수행할 수 있지만, 주어진 빛 강도에서 이러한 일이 일어날 확률은 작다. 따라서 광계의 다른 엽록소와 안테나 색소 단백질은 모두 협력하여 빛 에너지를 흡수하고 반응 중심으로 전달한다. 엽록소 ''a'' 외에도 이러한 색소-단백질 안테나 복합체에는 보조 색소라고 하는 다른 색소들이 존재한다.
녹색 식물에서는 엽록소 ''a''와 엽록소 ''b''가 주로 빛을 모으는 역할을 하며, 규조류나 갈조류 등 2차 공생 조류는 엽록소 ''c''를 포함하기도 한다.
3. 2. 광계 I 과 광계 II
엽록소는 식물이 빛으로부터 에너지를 흡수하여 광합성을 할 수 있도록 돕는 필수적인 역할을 한다.[74]엽록소 분자는 엽록체의 틸라코이드 막에 내장된 광계 내부와 주변에 배열되어 있다.[75] 광계에서 엽록소는 다음과 같은 세 가지 기능을 수행한다.
# 대다수의 엽록소(광계당 최대 수백 개의 분자)는 빛을 흡수한다.
# 흡수된 빛 에너지는 공명 에너지 전달을 통해 광계의 반응 중심에 있는 특정 엽록소 쌍으로 전달된다.
# 이 특정 엽록소 쌍은 전하 분리라는 과정을 통해 결합되지 않은 양성자(H+)와 전자(e–)를 생성하여 생합성을 추진한다.
현재 인정되는 두 가지 광계는 광계 I과 광계 II이며, 각각 P700과 P680이라는 고유한 반응 중심 색소를 가지고 있다. 이들 반응 중심 색소는 가장 잘 흡수하는 적색광 파장(나노미터 단위) 값으로 명명되었다. 각 광계에 있는 엽록소 종류의 동일성, 기능, 스펙트럼 특성은 서로 다르며, 이를 둘러싸고 있는 단백질의 구조에 의해 결정된다.
엽록소 반응 중심의 기능은 빛 에너지를 흡수하여 광계의 다른 부분으로 에너지를 전달하는 것이다. 광자의 흡수된 에너지는 전하 분리라는 과정을 통해 전자로 전달된다. 엽록소에서 전자를 제거하는 것은 산화 반응이다. 엽록소는 전자전달계라고 불리는 일련의 분자 중간생성물로 고에너지 전자를 공여한다. 엽록소의 하전된 반응 중심(P680+)은 물로부터 뽑아낸 전자를 받아들임으로써 다시 바닥 상태로 환원된다. P680+을 환원시키는 전자는 궁극적으로 여러 중간생성물을 통해 물(H2O)이 O2와 H+로 산화되는 과정에서 얻어진다. 이 반응은 식물과 같은 광합성 생물체가 산소(O2)를 생성하는 방식이며, 지구 대기의 거의 모든 O2의 원천이다. 광계 I은 일반적으로 광계 II에 이어서 직렬로 작동한다. 따라서 광계 I의 P700+는 일반적으로 틸라코이드 막의 많은 중간생성물들을 통해 전자를 받아들이고 궁극적으로 광계 II로부터 나오는 전자에 의해 환원된다. 그러나 틸라코이드 막의 전자 전달 반응은 복잡하며 P700+을 환원시키는 데 사용되는 전자 공급원은 다양할 수 있다.
반응 중심의 엽록소 색소에 의해 생성된 전자 흐름은 틸라코이드 막을 가로질러 H+ 이온을 펌핑하는 데 사용되며 주로 ATP(저장된 화학 에너지)의 생성에 사용되거나 NADP+를 NADPH로 환원시키는 데 사용되는 화학삼투적 위치 에너지인 양성자 구동력을 형성한다. NADPH는 CO2를 당으로 환원시키는 반응이나 다른 생합성 반응에 사용되는 보편적인 물질이다.
반응 중심의 엽록소-단백질 복합체는 빛을 간접적으로 흡수하고 다른 엽록소 색소의 도움없이 전하 분리 현상을 수행할 수 있지만 주어진 빛 강도 하에서 그러한 일이 일어날 확률은 작다. 따라서 광계의 다른 엽록소와 안테나 색소 단백질은 모두 협력하여 빛 에너지를 흡수하여 반응 중심으로 보낸다. 엽록소 ''a'' 외에도 이러한 색소-단백질 안테나 복합체에 존재하는 보조 색소라고 하는 다른 색소들이 있다.
3. 3. 보조 색소
엽록소 분자는 엽록체의 틸라코이드 막에 내장된 광계 내부와 주변에 배열되어 있다.[75] 광계에서 엽록소는 빛 흡수, 공명 에너지 전달을 통한 에너지 전달, 전하 분리의 세 가지 기능을 수행한다. 대부분의 엽록소는 빛을 흡수하는 역할을 하며, 흡수된 빛 에너지는 광계의 반응 중심에 있는 특정 엽록소 쌍으로 전달된다. 이 엽록소 쌍은 전하 분리를 통해 결합되지 않은 양성자(H+)와 전자(e–)를 생성하여 생합성을 추진한다.현재 인정되는 두 가지 광계는 광계 I과 광계 II이며, 각각 P700과 P680이라는 고유한 반응 중심 색소를 가지고 있다. 이 명칭은 각 반응 중심 색소가 가장 잘 흡수하는 적색광 파장(나노미터 단위)을 의미한다. 각 광계에 있는 엽록소 종류의 동일성, 기능, 스펙트럼 특성은 서로 다르며, 이를 둘러싸고 있는 단백질의 구조에 의해 결정된다.
반응 중심 엽록소의 기능은 빛 에너지를 흡수하여 광계의 다른 부분으로 전달하는 것이다. 흡수된 광자 에너지는 전하 분리 과정을 통해 전자로 전달된다. 엽록소에서 전자가 제거되면 산화 반응이 일어나고, 엽록소는 전자전달계라고 불리는 일련의 분자 중간생성물로 고에너지 전자를 전달한다. 전자를 잃은 엽록소의 반응 중심(P680+)은 물에서 전자를 받아 다시 바닥 상태로 돌아간다. P680+을 환원시키는 전자는 궁극적으로 물(H2O)이 O2와 H+로 산화되는 과정에서 얻어진다. 이 반응은 식물과 같은 광합성 생물체가 산소(O2)를 생성하는 방식이며, 지구 대기의 거의 모든 O2의 원천이다. 광계 I은 일반적으로 광계 II에 이어서 직렬로 작동한다. 따라서 광계 I의 P700+는 틸라코이드 막의 여러 중간생성물들을 통해 전자를 받아들이고, 궁극적으로 광계 II로부터 나오는 전자에 의해 환원된다. 그러나 틸라코이드 막의 전자 전달 반응은 복잡하며 P700+을 환원시키는 데 사용되는 전자 공급원은 다양할 수 있다.
반응 중심의 엽록소 색소에 의해 생성된 전자 흐름은 틸라코이드 막을 가로질러 H+ 이온을 펌핑하는 데 사용되며, 주로 ATP(저장된 화학 에너지) 생성 또는 NADP+를 NADPH로 환원시키는 데 사용되는 화학삼투적 위치 에너지인 양성자 구동력을 형성한다. NADPH는 CO2를 당으로 환원시키는 반응이나 다른 생합성 반응에 사용되는 보편적인 물질이다.
반응 중심의 엽록소-단백질 복합체는 빛을 간접적으로 흡수하고 다른 엽록소 색소의 도움없이 전하 분리 현상을 수행할 수 있지만, 주어진 빛 강도 하에서 그러한 일이 일어날 확률은 작다. 따라서 광계의 다른 엽록소와 안테나 색소 단백질은 모두 협력하여 빛 에너지를 흡수하여 반응 중심으로 보낸다. 엽록소 ''a'' 외에도 이러한 색소-단백질 안테나 복합체에 존재하는 보조 색소라고 하는 다른 색소들이 있다.
식물에는 클로로필 a와 b를 상호 변환하는 효소가 있으며[54], 외부 환경에 따라 a와 b의 비율을 변화시켜 적응하고 있을 가능성이 있다.
4. 화학 구조
엽록소 ''e''는 1966년에 조류에서 추출되었지만 화학적으로 설명되지 않은 색소를 위해 따로 남겨두었다. 문자 엽록소 외에도 엽록소 구조에 대한 곁사슬의 다양한 변형이 야생에 알려져 있다. 예를 들어 남세균인 프로클로로코쿠스속은 8-비닐 엽록소 ''a''와 8-비닐 엽록소 ''b''를 사용한다.[78]
광합성 세균이 가진 박테리오클로로필은 다음과 같다.
- 박테리오클로로필''a'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''b'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''c'' - 클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''d'' - 클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''e'' - 클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''f'' - 클로린 고리를 가짐.
- 박테리오클로로필''g'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
식물 및 남세균이 가진 클로로필(엽록소)은 다음과 같다.
C17-C18 결합 (환의 종류) | C2위 | C3위 | C7위 | C8위 | C17위 | 분자식 | 주요 분포 | ||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
클로로필a | 120px | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H72O5N4Mg | 일반 |
클로로필b | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CHO | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H70O6N4Mg | 식물 | |
클로로필c1 | 이중 결합 (포르피린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH=CHCOOH | C35H30O5N4Mg | 조류 | |
클로로필c2 | 이중 결합 (포르피린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH=CH2 | -CH=CHCOOH | C35H28O5N4Mg | 조류 | |
클로로필d | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CHO | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C54H70O6N4Mg | 남세균 | |
클로로필f | 단일 결합 (클로린) | -CHO | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H70O6N4Mg | 남세균 | |
클로로필류의 구조에 포함된 테트라피롤환에는, B환 및 D환이라고 불리는 피롤환의 불포화 상태가 다른 포르피린, 클로린, 박테리오클로린의 3종류가 존재한다. 어느 피롤환도 포화되어 있지 않은 것을 포르피린, D환의 C17-C18 결합만 포화된 것을 클로린, D환의 C17-C18 결합 및 B환의 C7-C8 결합 모두가 포화된 것을 박테리오클로린이라고 부른다.[51] 클로로필류의 명칭은 테트라피롤환의 종류 및 결합하고 있는 치환기에 의해 구분되며, 발견된 순서대로 알파벳이 부여된다. 클로로필과 박테리오클로로필의 알파벳 순서는 일치하지 않는다.
4. 1. 엽록소의 기본 구조
여러 종류의 엽록소가 알려져 있다. 이들은 모두 4개의 피롤형 고리 너머에 케톤을 함유한 5번째 고리의 존재에 의해 모체 클로린의 유도체로 정의된다. 대부분의 엽록소는 포르피린(헤모글로빈에서 발견됨)의 환원된 화합물인 클로린으로 분류된다. 이들은 전구체인 유로포르피리노젠 III을 포함하여 포르피린과 공통의 생합성 경로를 공유한다. N4 중심에 철이 결합되어 있는 헴과 달리 대부분의 엽록소는 마그네슘과 결합한다. Mg2+ 중심에 부착된 축 리간드는 명확성을 위해 종종 생략된다. 클로린 고리에는 일반적으로 긴 피틸 사슬()을 포함하는 다양한 곁사슬이 붙어 있다. 육상 식물에 가장 널리 분포되어 있는 형태는 엽록소 ''a''이다. 엽록소 ''a''와 엽록소 ''b''의 유일한 차이점은 엽록소 ''a''에는 메틸기가 있고 엽록소 ''b''에는 폼일기가 있다는 것이다. 이러한 차이로 인해 흡수 스펙트럼에 상당한 차이가 발생하여 식물이 가시광선의 더 많은 부분을 흡수할 수 있도록 한다.[76][77]엽록소의 구조는 다음과 같이 요약할 수 있다.[17][18]
엽록소 a | 엽록소 b | 엽록소 c1 | 엽록소 c2 | 엽록소 d | 엽록소 f[14] | |
---|---|---|---|---|---|---|
분자식 | C55H72O5N4Mg | C55H70O6N4Mg | C35H30O5N4Mg | C35H28O5N4Mg | C54H70O6N4Mg | C55H70O6N4Mg |
C2 작용기 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CHO |
C3 작용기 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CHO | −CH=CH2 |
C7 작용기 | −CH3 | −CHO | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 |
C8 작용기 | −CH2CH3 | −CH2CH3 | −CH2CH3 | −CH=CH2 | −CH2CH3 | −CH2CH3 |
C17 작용기 | −CH2CH2COO−피틸 | −CH2CH2COO−피틸 | −CH=CHCOOH | −CH=CHCOOH | −CH2CH2COO−피틸 | −CH2CH2COO−피틸 |
C17−C18 결합 | 단일 결합 (클로린) | 단일 결합 (클로린) | 이중 결합 (포르피린) | 이중 결합 (포르피린) | 단일 결합 (클로린) | 단일 결합 (클로린) |
발견 | 모두 | 대부분의 식물 | 각종 조류 | 각종 조류 | 남세균 | 남세균 |
엽록소 중, 산소 발생형 광합성을 하는 식물 및 남세균이 가진 것은 '''클로로필'''이며, 산소 비발생형 광합성을 하는 광합성 세균이 가진 것은 '''박테리오클로로필'''이라고 불린다[51]。
클로로필류의 구조에 포함된 테트라피롤환에는, B환 및 D환이라고 불리는 피롤환의 불포화 상태가 다른 포르피린, 클로린, 박테리오클로린의 3종류가 존재한다. 어느 피롤환도 포화되어 있지 않은 것을 포르피린, D환의 C17-C18 결합만 포화된 것을 클로린, D환의 C17-C18 결합 및 B환의 C7-C8 결합 모두가 포화된 것을 박테리오클로린이라고 부른다.
클로로필류의 명칭은 테트라피롤환의 종류 및 결합하고 있는 치환기에 의해 구분되며, 발견된 순서대로 알파벳이 부여된다. 클로로필과 박테리오클로로필의 알파벳 순서는 일치하지 않는다.
위치 번호 | C17-C18 결합 (환의 종류) | C2위 | C3위 | C7위 | C8위 | C17위 | 분자식 | 주요 분포 | |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
클로로필a | rowspan=6 | | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H72O5N4Mg | 일반 |
클로로필b | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CHO | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H70O6N4Mg | 식물 | |
클로로필c1 | 이중 결합 (포르피린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH=CHCOOH | C35H30O5N4Mg | 조류 | |
클로로필c2 | 이중 결합 (포르피린) | -CH3 | -CH=CH2 | -CH3 | -CH=CH2 | -CH=CHCOOH | C35H28O5N4Mg | 조류 | |
클로로필d | 단일 결합 (클로린) | -CH3 | -CHO | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C54H70O6N4Mg | 남세균 | |
클로로필f | 단일 결합 (클로린) | -CHO | -CH=CH2 | -CH3 | -CH2CH3 | -CH2CH2COO-Phytyl | C55H70O6N4Mg | 남세균 | |
4. 2. 엽록소의 종류
여러 종류의 엽록소가 알려져 있다. 이들은 모두 4개의 피롤형 고리 외에 케톤기를 포함한 5번째 고리의 존재로 인해 모체 클로린의 유도체로 정의된다. 대부분의 엽록소는 포르피린(헤모글로빈에서 발견됨)의 환원된 화합물인 클로린으로 분류된다. 이들은 전구체인 유로포르피리노젠 III을 포함하여 포르피린과 공통의 생합성 경로를 공유한다. N4 중심에 철이 결합되어 있는 헴과 달리 대부분의 엽록소는 마그네슘과 결합한다. 클로린 고리에는 일반적으로 긴 피틸 사슬을 포함하는 다양한 곁사슬이 붙어 있다. 육상 식물에 가장 널리 분포되어 있는 형태는 엽록소 ''a''이다. 엽록소 ''a''와 엽록소 ''b''의 유일한 차이점은 엽록소 ''a''에는 메틸기가 있고 엽록소 ''b''에는 폼일기가 있다는 것이다. 이러한 차이로 인해 흡수 스펙트럼에 상당한 차이가 발생하여 식물이 가시광선의 더 많은 부분을 흡수할 수 있도록 한다.[76][77]엽록소의 구조는 다음과 같이 요약할 수 있다.[17][18]
엽록소 a | 엽록소 b | 엽록소 c1 | 엽록소 c2 | 엽록소 d | 엽록소 f[73] | |
---|---|---|---|---|---|---|
분자식 | C55H72O5N4Mg | C55H70O6N4Mg | C35H30O5N4Mg | C35H28O5N4Mg | C54H70O6N4Mg | C55H70O6N4Mg |
C2 작용기 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CHO |
C3 작용기 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CH=CH2 | −CHO | −CH=CH2 |
C7 작용기 | −CH3 | −CHO | −CH3 | −CH3 | −CH3 | −CH3 |
C8 작용기 | −CH2CH3 | −CH2CH3 | −CH2CH3 | −CH=CH2 | −CH2CH3 | −CH2CH3 |
C17 작용기 | −CH2CH2COO−피틸 | −CH2CH2COO−피틸 | −CH=CHCOOH | −CH=CHCOOH | −CH2CH2COO−피틸 | −CH2CH2COO−피틸 |
C17−C18 결합 | 단일 결합 (클로린) | 단일 결합 (클로린) | 이중 결합 (포르피린) | 이중 결합 (포르피린) | 단일 결합 (클로린) | 단일 결합 (클로린) |
발견 | 모두 | 대부분의 식물 | 각종 조류 | 각종 조류 | 남세균 | 남세균 |
엽록소 중, 산소 발생형 광합성을 하는 식물 및 남세균이 가진 것은 클로로필(Chlorophyll), 산소 비발생형 광합성을 하는 광합성 세균이 가진 것은 박테리오클로로필(Bacteriochlorophyll)이라고 불린다[51]。
클로로필류의 구조에 포함된 테트라피롤환에는, B환 및 D환이라고 불리는 피롤환의 불포화 상태가 다른 포르피린, 클로린, 박테리오클로린의 3종류가 존재한다. 어느 피롤환도 포화되어 있지 않은 것을 포르피린, D환의 C17-C18 결합만 포화된 것을 클로린, D환의 C17-C18 결합 및 B환의 C7-C8 결합 모두가 포화된 것을 박테리오클로린이라고 부른다.
클로로필류의 명칭은 테트라피롤환의 종류 및 결합하고 있는 치환기에 의해 구분되며, 발견된 순서대로 알파벳이 부여된다. 클로로필과 박테리오클로로필의 알파벳 순서는 일치하지 않는다.
C17-C18 결합 (환의 종류) | C2위 | C3위 | C7위 | C8위 | C17위 | 분자식 | 주요 분포 | ||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
클로로필a | 120px | 단일 결합 (클로린) | -CH=CH2 | 일반 | |||||
클로로필b | 단일 결합 (클로린) | -CH=CH2 | -CHO | 식물 | |||||
클로로필c1 | 이중 결합 (포르피린) | -CH=CH2 | -CH=CHCOOH | 조류 | |||||
클로로필c2 | 이중 결합 (포르피린) | -CH=CH2 | -CH=CH2 | -CH=CHCOOH | 조류 | ||||
클로로필d | 단일 결합 (클로린) | -CHO | 남세균 | ||||||
클로로필f | 단일 결합 (클로린) | -CHO | -CH=CH2 | 남세균 | |||||
- 박테리오클로로필류
- * 박테리오클로로필''a'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''b'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''c'' - 클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''d'' - 클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''e'' - 클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''f'' - 클로린 고리를 가짐.
- * 박테리오클로로필''g'' - 박테리오클로린 고리를 가짐.
5. 엽록소 함량의 측정
엽록소는 유기 용매를 사용하여 단백질로부터 추출할 수 있다.[79][80][81] 이러한 방법으로 잎 속의 엽록소 농도를 추정할 수 있다.[82] 엽록소 ''a''와 엽록소 ''b''를 분리하는 방법도 있다.
다이에틸 에터에서 엽록소 ''a''의 최대 흡광도는 대략 430nm와 662nm이고, 엽록소 ''b''의 최대 흡광도는 대략 453nm와 642nm이다.[83] 엽록소 ''a''의 흡수 피크는 465nm와 665nm이다. 엽록소 ''a''는 673nm(최대) 및 726nm에서 형광을 발한다. 엽록소 ''a''의 피크 몰 흡수 계수는 105 M−1 cm−1을 초과하며, 이는 저분자 유기 화합물 중 가장 높은 수치이다.[84] 90% 아세톤-물에서 엽록소 ''a''의 피크 흡수 파장은 430nm와 664nm, 엽록소 ''b''의 피크 흡수 파장은 460nm와 647nm, 엽록소 ''c1''의 피크 흡수 파장은 442nm와 630nm, 엽록소 ''c2''의 피크 흡수 파장은 444nm와 630nm, 엽록소 ''d''의 피크 흡수 파장은 401nm와 455nm와 696nm이다.[85]
형광 방출 비율은 엽록소 함량을 측정하는 데 사용할 수 있다. 더 낮은 파장에서 엽록소를 형광으로 여기시키면, 705nm 및 735nm에서 엽록소 형광 방출 비율은 화학적 테스트와 비교할 때 엽록소 함량과 선형 관계를 가진다. ''F''735/''F''700 비율은 41 mg m−2에서 675 mg m−2 범위의 화학적 테스트와 비교하여 ''r''2 0.96의 상관값을 보였다. 기텔슨(Gitelson)은 또한 mg m−2 단위의 엽록소 함량을 직접적으로 판독하는 공식을 개발했다. 이 공식은 0.95의 상관 관계 ''r''2 값을 사용하여 41 mg m−2에서 675 mg m−2까지의 엽록소 함량을 측정하는 신뢰할 수 있는 방법을 제공했다.[86]
6. 생합성
일부 식물에서 엽록소는 글루탐산으로부터 유도되며 헴 및 시로헴과 공유하는 분지형 생합성 경로를 따라 합성된다.[87][88][89] 엽록소 생성효소[90]는 엽록소 ''a''의 생합성을 완료하는 효소이다.[91][92]
: 클로로필라이드 ''a'' + 피틸 이인산 ⇄ 엽록소 ''a'' + 이인산
이 전환은 20개의 탄소를 가진 다이테르펜 알코올 피톨과 함께 클로로필라이드 ''a''의 카복실기의 에스터를 형성한다. 엽록소 ''b''는 클로로필라이드 ''b''에 작용하는 동일한 효소에 의해 만들어진다. 엽록소 ''d''와 엽록소 ''f''에 대해서도 동일한 내용이 알려져 있으며, 둘 다 궁극적으로 클로로필라이드 ''a''로부터 만들어지는 상응하는 클로로필라이드로부터 만들어진다.[93]
속씨식물에서 엽록소 생합성 경로의 후반부는 광의존적이다. 이러한 식물은 어둠 속에서 자라면 창백해진다(황화된다). 비관다발식물과 녹조류는 광비의존적인 효소를 추가로 갖고 있어서 어둠 속에서도 녹색으로 자란다.[94]
엽록소는 단백질에 결합되어 있다. 생합성 중간생성물 중 하나인 프로토클로로필라이드는 대부분 유리된 형태로 생성되며 빛이 있는 조건에서 광감작제 역할을 하여 식물에 독성이 될 수 있는 자유 라디칼을 형성한다. 따라서 식물은 이 엽록소 전구체의 양을 조절한다. 속씨식물에서 이 조절은 생합성 경로의 중간생성물 중 하나인 아미노레불린산(ALA) 단계에서 이루어진다. 아미노레불린산을 공급받는 식물은 높은 수준의 독성을 지닌 프로토클로로필라이드를 축적한다.[95]
7. 노화와 엽록소 주기
식물 노화 과정에는 엽록소의 분해가 포함된다. 예를 들어 엽록소가수분해효소는 피틸기 곁사슬을 가수분해하여 클로로필라이드 ''a'' 또는 클로로필라이드 ''b''로부터 엽록소가 생합성되는 반응의 역반응을 촉매한다. 클로로필라이드 ''a''는 클로로필라이드 ''b''로 전환될 수 있고 클로로필라이드 ''b''는 엽록소 ''b''로 재에스터화될 수 있으므로 이러한 과정을 통해 엽록소 ''a''와 엽록소 ''b'' 사이의 순환이 가능해진다. 더욱이 엽록소 ''b''는 (71-하이드록시엽록소 ''a''를 통해) 다시 엽록소 ''a''로 직접적으로 환원되어 순환을 완료할 수 있다.[96][97] 노화의 후기 단계에서 클로로필라이드는 다음과 같은 일반 구조를 갖는 무형광 엽록소 이화물질(NCC)로 알려진 무색의 테트라피롤 그룹으로 전환된다.
이 화합물은 숙성 중인 과일에서도 확인되었으며 낙엽 식물에 특징적인 단풍색을 부여한다.[97][98]
8. 분포
엽록소 지도는 매달 바닷물 1입방미터당 엽록소의 밀리그램으로 표시한다. 엽록소 함량이 매우 낮은 곳, 즉 식물성 플랑크톤의 수가 매우 적은 곳은 파란색으로 표시된다. 엽록소의 농도가 높은 곳, 즉 식물성 플랑크톤이 많이 자라고 있는 곳은 노란색으로 표시된다. 이는 미국 항공 우주국(NASA)의 아쿠아 위성에 있는 중간 해상도 이미지 분광복사기(Moderate Resolution Imaging Spectroradiometer, MODIS)를 통해 관측한 결과이다. 육지는 짙은 회색이며, MODIS가 해빙, 극지방의 암흑, 구름으로 인해 데이터를 수집할 수 없는 곳은 밝은 회색이다.[99]
작은 표면에 서식하는 해양 식물이 번성하는 엽록소의 농도가 가장 높은 곳은 차가운 극지방의 물이나 적도 주변이나 대륙 해안을 따라 해류가 차가운 물을 수면으로 가져오는 곳이다. 식물성 플랑크톤의 생장을 자극하는 것은 찬물 그 자체가 아니다. 대신 차가운 온도는 종종 바다 깊은 곳에서 물이 표면으로 솟아올라 시간이 지남에 따라 축적된 영양분을 운반한다는 신호이다. 극지방의 해역에서는 식물이 자랄 수 없는 어두운 겨울 동안 표층수에 영양분이 축적된다. 봄과 여름에 햇빛이 다시 들어오면 식물은 고농도로 번성한다.[99]
9. 요리 및 산업적 이용
요리사는 파스타나 증류주와 같은 다양한 음식과 음료를 녹색으로 착색하기 위해 엽록소를 사용한다. 압생트는 만드는 데 사용되는 다양한 허브를 통해 도입된 엽록소에서 자연적으로 녹색을 얻는다.[100] 엽록소는 물에 녹지 않으며, 먼저 소량의 식물성 기름과 혼합하여 원하는 용액을 얻는다.
합성 엽록소는 식품 첨가물 착색료로 등록되어 있으며, E 넘버는 E140이다. 유럽 및 미국에서 식품 첨가물로 승인되었다. E 번호는 E140 및 E141(구리 착체)이다. 일본에서는 구리 클로로필과 구리 클로로필린 Na염이 승인되었다.[59] 시금치, 파슬리, 상추에 비교적 많이 포함되어 있다.[57][58]
10. 생물학적 용도
2002년 연구에 따르면 "어두운 곳에 보관된 잎과 달리 강한 빛에 노출된 잎에는 분해된 주요 안테나 단백질이 포함되어 있으며 이는 분리된 단백질의 조명에 대한 연구와 일치한다"라는 사실이 밝혀졌다. 이는 식물의 단기 행동에서 "활성 산소가 생체 내에서 역할을 한다"는 가설을 뒷받침하는 것으로 나타났다.[101]
엽록소 계열의 영양 보충제에는 식물성 플랑크톤 등의 가공 정도에 따라 여러 종류가 있다.
종류 | 설명 |
---|---|
클로렐라나 스피루리나 등 식물성 플랑크톤 그 자체 | 소화가 잘 되도록 가공된 것도 있다. |
엽록소만을 추출한 것 | 분자 구조상 측쇄가 길기 때문에 소수성이 높다. |
Chlorophyllin|클로로필린영어 | 추출한 엽록소를 더욱 수용성이 높아지도록 화학적으로 변화시킨 것이다. |
엽록소 및 클로로필린에서는 착체의 금속을 조절한 제품도 있다. Na, Cu, Fe, Mg 등 제품에 따라 다르다.
참조
[1]
논문
Chlorophyll does not reflect green light – how to correct a misconception
[2]
웹사이트
Chlorophyll
http://www.chm.bris.[...]
University of Bristol
[3]
백과사전
chlorophyll
http://www.etymonlin[...]
[4]
논문
Influence of green, red and blue light emitting diodes on multiprotein complex proteins and photosynthetic activity under different light intensities in lettuce leaves (Lactuca sativa L.)
2014-03-01
[5]
웹사이트
Photosynthetic Pigments
http://www.ucmp.berk[...]
University of California Museum of Paleontology
[6]
논문
Joseph Pelletier and Joseph Caventou
1951-09-01
[6]
논문
Notice sur la matière verte des feuilles
https://archive.org/[...]
1817-01-01
[7]
논문
Zur Kenntniss der Zusammensetzung des Chlorophylls
http://babel.hathitr[...]
1906-01-01
[8]
Print
5th Pigments in Food congress- for quality and health
University of Helsinki
[9]
논문
The total synthesis of chlorophyll
http://media.iupac.o[...]
1960-07-01
[10]
논문
Absolute Configuration and the Structure of Chlorophyll
1967-10-14
[11]
논문
The total synthesis of chlorophyll a
[12]
뉴스
A New Form of Chlorophyll?
http://www.scientifi[...]
2010-08-01
[13]
뉴스
Infrared chlorophyll could boost solar cells.
https://www.newscien[...]
2010-08-19
[14]
논문
A red-shifted chlorophyll
2010-09-01
[15]
웹사이트
Photosynthesis
http://biology.clc.u[...]
University of Cincinnati
[16]
웹사이트
Photosynthesis, Chloroplast Learn Science at Scitable
https://www.nature.c[...]
[17]
서적
Chlorophylls and Bacteriochlorophylls
[18]
논문
Synthetic Chlorins, Possible Surrogates for Chlorophylls, Prepared by Derivatization of Porphyrins
2017-01-01
[19]
논문
Chlorophylls d and f: Synthesis, occurrence, light-harvesting, and pigment organization in chlorophyll-binding protein complexes
2019-01-01
[20]
논문
The use of acetone and methanol in the estimation of chlorophyll in the presence of phaeophytin in plant
[21]
논문
Some Spectral Characteristics of Chlorophyll c from Tridacna crocea Zooxanthellae
https://www.biodiver[...]
1969-02-01
[22]
웹사이트
Methods for analysis of benthic photosynthetic pigment
http://www.lifescien[...]
School of Life Sciences, Napier University
2001-03-21
[23]
논문
Chlorophyll content monitoring in sugar maple (Acer saccharum)
2003-10-01
[24]
서적
Pigments in vegetables: chlorophylls and carotenoids
Van Nostrand Reinhold
[25]
논문
Determination of accurate extinction coefficients and simultaneous equations for assaying chlorophylls a and b extracted with four different solvents: verification of the concentration of chlorophyll standards by atomic absorption spectroscopy
[26]
서적
Photosynthesis in algae
Kluwer
[27]
논문
The Chlorophyll Fluorescence Ratio F735/F700 as an Accurate Measure of Chlorophyll Content in Plants
1999-01-01
[28]
웹사이트
New proximal sensors of vegetation: towards a non destructive quantitative estimation of plant constituents
http://www.ese.u-psu[...]
2012-10-01
[29]
논문
Tetrapyrroles: the pigments of life
2000-12-01
[30]
서적
Ciba Foundation Symposium 180 - the Biosynthesis of the Tetrapyrrole Pigments
[31]
논문
Biosynthesis of chlorophylls from protoporphyrin IX
2003-06-01
[32]
논문
Pre-loading of chlorophyll synthase with tetraprenyl diphosphate is an obligatory step in chlorophyll biosynthesis
https://epub.ub.uni-[...]
2002-11-01
[33]
논문
Recent advances in chlorophyll biosynthesis and breakdown in higher plants
https://boris.unibe.[...]
2004-09-01
[34]
논문
Recent advances in chlorophyll biosynthesis
2006-11-01
[35]
논문
Effects of Light and Oxygen on Chlorophyll d Biosynthesis in a Marine Cyanobacterium Acaryochloris marina
2022-03-01
[36]
논문
X-ray crystal structure of the light-independent protochlorophyllide reductase
2010-05-00
[37]
논문
FLU: a negative regulator of chlorophyll biosynthesis in Arabidopsis thaliana
2001-10-00
[38]
웹사이트
Chlorophyll Cycle
https://www.qmul.ac.[...]
IUBMB
2011-00-00
[39]
논문
Chlorophyll degradation during senescence
[40]
논문
Colorless tetrapyrrolic chlorophyll catabolites found in ripening fruit are effective antioxidants
[41]
웹사이트
Chlorophyll : Global Maps
https://earthobserva[...]
[42]
서적
Hideous absinthe : a history of the devil in a bottle
https://books.google[...]
I.B.Tauris, 2004
[43]
논문
All that glistens is not (Green) gold: Historicising the contemporary chlorophyll fad through a multimodal analysis of Swedish marketing, 1950–1953
2022-00-00
[44]
논문
Discovery of Natural Photosynthesis using Zn-Containing Bacteriochlorophyll in an Aerobic Bacterium Acidiphilium rubrum
[45]
간행물
亜鉛クロロフィルをもつ光合成生物がいた!
[46]
웹사이트
銅クロロフィル、銅クロロフィリンナトリウム(横浜市衛生研究所 - 食品衛生情報)
http://www.city.yoko[...]
[47]
웹사이트
クロロフィル
https://www.rokkou-c[...]
[48]
논문
新しく発見されたクロロフィルf
https://photosyn.jp/[...]
[49]
논문
A red-shifted chlorophyll
2010-09-10
[50]
웹사이트
目に見える光がなくても大丈夫!?遠赤色光で光合成を行えるシアノバクテリアの秘密を解明 ~光化学系Iにおける、クロロフィルfの位置と機能の特定~
https://www.tus.ac.j[...]
東京理科大学
[51]
논문
近赤外光を吸収するバクテリオクロロフィル色素の生合成経路解明と応用
https://seikagaku.jb[...]
[52]
논문
クロロフィル類の精密分析
[53]
논문
海洋における植物プランクトンの生理生態と物質循環における役割に関する研究
[54]
KEGG
[55]
논문
食用色素の化学
https://doi.org/10.5[...]
[56]
서적
Handbook of Food Engineering
CRC Press Taylor & Francis Group
[57]
웹사이트
Chlorophyll and Chlorophyllin
http://lpi.oregonsta[...]
[58]
논문
Chlorophyll‐bound Magnesium in Commonly Consumed Vegetables and Fruits: Relevance to Magnesium Nutrition
[59]
웹사이트
各添加物の使用基準及び保存基準
http://www.ffcr.or.j[...]
厚生省
2017-06-23
[60]
논문
Chlorophyll does not reflect green light – how to correct a misconception
[61]
웹사이트
Chlorophyll
http://www.chm.bris.[...]
University of Bristol
[62]
사전
chlorophyll
http://www.etymonlin[...]
[63]
논문
Influence of green, red and blue light emitting diodes on multiprotein complex proteins and photosynthetic activity under different light intensities in lettuce leaves (Lactuca sativa L.)
2014-03-00
[64]
웹사이트
Photosynthetic Pigments
http://www.ucmp.berk[...]
2010-07-17
[65]
논문
Joseph Pelletier and Joseph Caventou
1951-09-00
[66]
논문
Zur Kenntniss der Zusammensetzung des Chlorophylls
http://babel.hathitr[...]
1906-00-00
[67]
Print
5th Pigments in Food congress- for quality and health
University of Helsinki
[68]
논문
The total synthesis of chlorophyll
http://media.iupac.o[...]
1960-07-00
[69]
논문
Absolute Configuration and the Structure of Chlorophyll
1967-10-14
[70]
논문
The total synthesis of chlorophyll a
[71]
저널
A New Form of Chlorophyll?
http://www.scientifi[...]
2010-08-01
[72]
웹사이트
Infrared chlorophyll could boost solar cells.
https://www.newscien[...]
2012-04-15
[73]
저널
A red-shifted chlorophyll
2010-09-01
[74]
웹사이트
Photosynthesis
http://biology.clc.u[...]
University of Cincinnati
[75]
서적
Essentials of Cell Biology
Nature
2013-07-05
[76]
서적
Chlorophylls and Bacteriochlorophylls
[77]
저널
Synthetic Chlorins, Possible Surrogates for Chlorophylls, Prepared by Derivatization of Porphyrins
2017-01-01
[78]
저널
Chlorophylls d and f: Synthesis, occurrence, light-harvesting, and pigment organization in chlorophyll-binding protein complexes
2019-01-01
[79]
저널
The use of acetone and methanol in the estimation of chlorophyll in the presence of phaeophytin in plant
[80]
저널
Some Spectral Characteristics of Chlorophyll c from Tridacna crocea Zooxanthellae
https://www.biodiver[...]
1969-02-01
[81]
웹사이트
Methods for analysis of benthic photosynthetic pigment
http://www.lifescien[...]
School of Life Sciences, Napier University
2001-03-21
[82]
저널
Chlorophyll content monitoring in sugar maple (Acer saccharum)
2003-10-01
[83]
서적
Pigments in vegetables: chlorophylls and carotenoids
Van Nostrand Reinhold
[84]
저널
Determination of accurate extinction coefficients and simultaneous equations for assaying chlorophylls a and b extracted with four different solvents: verification of the concentration of chlorophyll standards by atomic absorption spectroscopy
[85]
서적
Photosynthesis in algae
Kluwer
[86]
저널
The Chlorophyll Fluorescence Ratio ''F''735/''F''700 as an Accurate Measure of Chlorophyll Content in Plants
1999-01-01
[87]
저널
Tetrapyrroles: the pigments of life
2000-12-01
[88]
서적
Ciba Foundation Symposium 180 - the Biosynthesis of the Tetrapyrrole Pigments
[89]
저널
Biosynthesis of chlorophylls from protoporphyrin IX
2003-06-01
[90]
저널
Pre-loading of chlorophyll synthase with tetraprenyl diphosphate is an obligatory step in chlorophyll biosynthesis
https://epub.ub.uni-[...]
2002-11-01
[91]
저널
Recent advances in chlorophyll biosynthesis and breakdown in higher plants
https://boris.unibe.[...]
2004-09-01
[92]
저널
Recent advances in chlorophyll biosynthesis
2006-11-01
[93]
저널
Effects of Light and Oxygen on Chlorophyll d Biosynthesis in a Marine Cyanobacterium Acaryochloris marina
2022-03-01
[94]
저널
X-ray crystal structure of the light-independent protochlorophyllide reductase
2010-05-01
[95]
저널
FLU: a negative regulator of chlorophyll biosynthesis in Arabidopsis thaliana
2001-10-01
[96]
웹사이트
Chlorophyll Cycle
https://www.qmul.ac.[...]
IUBMB
2020-06-04
[97]
저널
Chlorophyll degradation during senescence
[98]
저널
Colorless tetrapyrrolic chlorophyll catabolites found in ripening fruit are effective antioxidants
[99]
웹사이트
Chlorophyll : Global Maps
http://earthobservat[...]
2014-02-02
[100]
서적
Hideous absinthe : a history of the devil in a bottle
https://books.google[...]
I.B.Tauris, 2004
[101]
저널
Involvement of active oxygen species in degradation of light-harvesting proteins under light stresses
2002-12-01
관련 사건 타임라인
( 최근 20개의 뉴스만 표기 됩니다. )
6억년 전 끝난 ‘녹색 지구’ 시대…인간이 단 수십년 만에 되돌리나
"미세 플라스틱, 광합성 방해해 식량 공급 감소 초래"
본 사이트는 AI가 위키백과와 뉴스 기사,정부 간행물,학술 논문등을 바탕으로 정보를 가공하여 제공하는 백과사전형 서비스입니다.
모든 문서는 AI에 의해 자동 생성되며, CC BY-SA 4.0 라이선스에 따라 이용할 수 있습니다.
하지만, 위키백과나 뉴스 기사 자체에 오류, 부정확한 정보, 또는 가짜 뉴스가 포함될 수 있으며, AI는 이러한 내용을 완벽하게 걸러내지 못할 수 있습니다.
따라서 제공되는 정보에 일부 오류나 편향이 있을 수 있으므로, 중요한 정보는 반드시 다른 출처를 통해 교차 검증하시기 바랍니다.
문의하기 : help@durumis.com