메테인 세균
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1. 개요
메테인 세균은 구균 또는 간균 형태를 가지며, 혐기성 조건에서 메탄을 생성하는 고세균이다. 150종 이상이 분류되었으며, 펩티도글리칸이 없는 세포벽, 다양한 기질 활용 능력, 그리고 극한 환경에서의 생존 능력이 특징이다. 메테인 생성균은 습지, 동물의 소화관, 폐수 처리장 등 다양한 환경에서 중요한 생태학적 역할을 수행하며, 메탄 생성 과정은 여러 효소와 조효소에 의해 촉매된다. 또한, 메테인 세균은 생명공학적 응용, 특히 폐수 처리 및 바이오가스 생산에 활용되며, 지구 온난화에 영향을 미치는 온실 기체인 메탄을 생성한다. 메테인 세균은 생명 진화와 외계 생명체 존재 가능성 연구에도 중요한 단서를 제공하며, 1776년 알레산드로 볼타에 의해 처음 발견되었다.
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메테인 세균 | |
---|---|
개요 | |
학문 분야 | 미생물학 |
유형 | 미생물 |
정의 | 대사 과정에서 메탄을 생성하는 미생물 |
생화학적 특징 | |
대사 작용 | 메탄 생성 |
기질 | 이산화탄소 포름산 아세트산 메틸아민 메탄올 |
최종 생산물 | 메탄 |
생태 및 환경 | |
서식 환경 | 습지 논 소화 기관 침전물 열수 분출구 |
환경 기여 | 온실가스 배출 생물학적 정화 생물 에너지 생산 |
분류 | |
도메인 | 고세균 |
주요 그룹 | 에우리아케오타 바테이아케오타 크렌아케오타 나노아케아 |
기타 | |
관련 용어 | 메탄 산화균 |
2. 형태 및 생태
메테인 세균은 일반적으로 구균(구형) 또는 간균(원통형) 형태를 띠지만, 긴 필라멘트 형태(''Methanobrevibacter filliformis'', ''Methanospirillum hungatei'')나 굽은 형태(''Methanobrevibacter curvatus'', ''Methanobrevibacter cuticularis'')도 존재한다. 현재까지 150종 이상의 메테인 세균이 보고되었으며,[4] 이들은 고세균의 Euryarchaeota 문 내에서 단계통군을 형성하지는 않는다.
메테인 세균은 메테인 생성 효소와 ATP 생성에 관여하는 철-황 클러스터가 산소에 매우 민감하기 때문에, 산소가 있는 환경에서는 기능을 할 수 없는 절대 혐기성 생물이다. 그러나 산소에 대한 민감성은 종마다 다양하여, 벼 논 토양처럼 일시적으로 산소가 공급되는 환경에서도 메테인 생성이 관찰되기도 한다.[5][6][7] 산소 및 활성 산소종(ROS)을 해독하는 다양한 분자 메커니즘이 존재할 것으로 추정된다.[8] 예를 들어, 습지나 토양에서 흔히 발견되는 ''Candidatus'' Methanothrix paradoxum은 산소가 있는 환경 내의 무산소 미세 구역에서 기능할 수 있지만, 미량의 산소에도 민감하며 장기간의 산소 스트레스는 견디지 못한다.[9] 반면, ''Methanosarcina barkeri''는 초과산화물 불균등화 효소(Superoxide dismutase, SOD)를 가지고 있어 다른 종보다 산소 환경에서 더 오래 생존할 수 있다.[10]
다른 고세균과 마찬가지로 메테인 세균의 세포벽에는 세균에서 발견되는 펩티도글리칸이 없다.[11] 대신 일부 종은 슈도펩티도글리칸(pseudopeptidoglycan)으로 구성된 세포벽을 가지며, 다른 종들은 준결정 형태의 단백질 배열(S-layer)을 가지고 있다.[12] 일부 계통에서는 ''Methanospirillum''의 단백질성 외피나 ''Methanosarcina'' 응집 세포의 메탄콘드로이틴과 같은 특수한 형태의 세포 외피가 발견되기도 한다.[13]
혐기성 환경에서 메테인 생성균은 다른 미생물의 혐기성 호흡 과정에서 생성된 과도한 수소와 발효 산물을 제거하는 중요한 생태학적 역할을 수행한다.[14] 이들은 일반적으로 산소, 질산염, 삼산화철(Fe(III)), 황산염과 같은 전자 수용체가 고갈된 환경에서 번성한다. 이러한 환경에는 습지 및 논 토양, 다양한 동물의 소화관 (반추동물, 절지동물, 인간 포함),[15][16][17] 폐수 처리 시설 및 매립지, 심해 해양 퇴적물, 열수 분출공 등이 포함된다.[18] 대부분의 메테인 생성균은 일반적인 환경에 서식하지만, 일부는 호열성 세균이나 중온성 세균으로 분류된다. 예를 들어, 인간의 장에서 흔히 발견되는 ''Methanobrevibacter smithii''나 반추동물에 널리 분포하는 ''Methanobrevibacter ruminantium'' 등은 중온성 세균이다.
메테인 생성균은 특히 퇴적 속도가 빠르고 유기물이 풍부한 대륙 연안 퇴적물이나 기타 수생 퇴적물에서 유기 탄소를 다시 무기물로 만드는 과정(재광물화)에 중요한 역할을 한다. 적절한 압력과 온도 조건 하에서는 생물학적 활동으로 생성된 메탄이 메탄 클라트레이트 형태로 대규모로 축적될 수 있으며,[19] 이는 강력한 온실가스의 주요 저장고가 된다.[20]
대부분의 메테인 생성균은 이산화 탄소를 이용하여 스스로 유기물을 합성하는 자가영양 생물이지만, 아세트산(CH3COO−)을 산화하여 에너지를 얻는 종들은 화학영양생물로 분류된다. 메테인 생성균은 혐기성 메탄 산화 고세균과 밀접한 관련이 있는데, 이들은 메탄을 에너지원으로 사용하며 황산염이나 질산염을 환원시킨다.[26]
2. 1. 극한 환경에서의 메테인 생성균
메테인 생성균은 지구상의 다양한 극한 환경에서도 발견된다. 이들은 깊은 지하 서식지에서 가장 흔하게 발견되는 고세균 중 하나로 알려져 있다. 예를 들어, 그린란드의 수 킬로미터 두께 얼음 아래[21]나 뜨겁고 건조한 사막 토양에서도 서식하는 것이 확인되었다.[22][23]캘리포니아 대학교 버클리 연구진은 그린란드 빙하 코어 샘플을 분석하여, 얼음 아래 약 3km 깊이에서 살아있는 메테인 생성균을 발견했다. 이 미생물들은 -40°C에서 145°C에 이르는 넓은 온도 범위에서 거대 분자 손상을 복구하며 일정한 신진대사를 유지하는 능력을 보였다.[21] 또한, 미국의 유타, 아이다호, 캘리포니아 및 캐나다와 칠레의 여러 사막 환경 토양과 증기 샘플에서도 메테인 생성균의 생존 증거가 발견되었다. 특히 유타의 화성 사막 연구 기지 근처 샘플에서 뚜렷한 생존 징후가 확인되었다.[22][23]
깊은 현무암 암석이나 해령 근처의 열수 분출공과 같은 환경에서도 메테인 생성균이 발견된다. 이들은 올리빈이 물과 반응하여 수소를 생성하는 사문암화 과정이나, 물의 열분해 및 방사선 분해를 통해 에너지를 얻는 것으로 추정된다. 로스트 시티의 수열구 시스템이 대표적인 예시다.[18]
극한 환경에 적응한 메테인 생성균 중에는 높은 온도에서 잘 자라는 호열성 세균들이 많다. ''Methanopyrus kandleri'', ''Methanothermobacter marburgensis'', ''Methanocaldococcus jannaschii'' 등이 대표적이다. ''Methanopyrus kandleri'' Strain 116은 105°C에서도 증식할 수 있으며, 반대로 ''Methanogenium frigidum''은 15°C의 낮은 온도에서도 자랄 수 있다. 높은 염분 농도에 적응한 고도 호염성 메탄 생성 세균으로는 ''Methanohalobium evestigatum''이 알려져 있으며, 최적 생장을 위해 4.3 M의 NaCl 농도를 필요로 한다.
한편, 화성 대기에서 메탄이 검출되면서, 화성에도 메테인 생성균과 같은 생명체가 존재할 가능성이 제기되었다.[24] 2019년 6월, NASA의 큐리오시티 로버는 화성 표면에서 메탄 농도가 급증하는 현상을 관측했는데, 이는 지하 미생물의 활동 결과일 수 있다는 추측을 낳으며 화성의 생명체 탐사에 대한 기대를 높였다.[25]
2. 2. 동물의 소화관
동물의 소화관은 영양분이 풍부하고 혐기성 환경이 지배적이어서, 메탄 생성균을 포함한 많은 미생물에게 이상적인 서식지를 제공한다.[15][16][17] 그럼에도 불구하고 메탄 생성균과 고세균은 최근까지 장내 미생물 군집의 일부로 간과되었다. 그러나 이들은 H2, 아세테이트, 메탄올, 메틸아민과 같은 세균 발효의 최종 산물을 활용하여 장내 균형을 유지하는 데 중요한 역할을 한다.최근 16S rRNA 분석을 기반으로 한 동물 장내 고세균 존재에 대한 광범위한 조사를 통해 고세균의 다양성과 풍부함에 대한 포괄적인 시각을 제공했다.[27][28][29] 이 연구들은 소수의 고세균 계통만 존재하며, 대부분이 메탄 생성균인 반면, 비메탄 생성 고세균은 드물고 풍부하지 않다는 것을 밝혀냈다. 고세균 다양성의 분류학적 분류를 통해 동물의 소화관에는 세 개의 문 대표자만이 존재한다는 것이 확인되었다: Methanobacteriota (목 Methanobacteriales), Thermoplasmatota (목 Methanomassiliicoccales), Halobacteriota (목 Methanomicrobiales 및 Methanosarcinales). 그러나 이들 목 내의 모든 과와 속이 동물 장에서 검출된 것은 아니며, 소수의 속만이 검출되어 장 환경에 대한 특정한 적응을 시사한다.
3. 메테인 생성 과정
메테인 세균은 산소가 없는 혐기성 환경에서 다양한 유기물이나 이산화 탄소를 이용하여 메탄(CH₄)을 만드는 미생물이다. 이 과정을 메탄 생성이라고 부른다.[40] 메테인 세균은 수소(H₂)와 이산화 탄소(CO₂), 아세트산, 포름산염, 메탄올, 메틸아민 등 비교적 단순한 화합물을 기질로 사용하여 메탄을 생성한다.[40] 자연 환경에서는 특히 수소와 아세트산이 중요한 기질로 사용된다.
메탄 생성 반응은 여러 종류가 있으며, 각 반응마다 고유한 효소와 조효소가 관여한다. 반응 방식과 에너지 효율은 기질에 따라 다르지만, 모든 메탄 생성 과정은 세포 내외의 이온 농도 기울기를 형성하여 ATP를 합성하는 방식으로 에너지를 얻는다는 공통점을 가진다.[41] 예를 들어, 수소와 이산화 탄소를 이용하는 반응(ΔG˚’ = -134 kJ/mol)은 아세트산을 이용하는 반응(ΔG˚’ = -31 kJ/mol)보다 더 많은 에너지를 생성한다. 각 반응의 상세한 과정과 메커니즘은 하위 섹션에서 자세히 다룬다.
메테인 세균은 다양한 환경에서 발견되지만, 사용하는 기질의 종류는 상대적으로 제한적이다. 가장 흔한 기질은 이산화 탄소와 수소이지만, ''Methanosarcinacea'' 강에 속하는 종들처럼 일산화 탄소, 아세트산, 메탄올 등 더 다양한 유기물을 이용하는 종류도 있다. 심지어 알코올이나 다이메틸 설파이드 같은 물질을 이용하는 메테인 세균도 발견되었다.[75]
혐기성 환경에서는 메테인 세균 외에도 다양한 미생물이 존재하기 때문에, 기질을 두고 경쟁이 일어나기도 한다. 예를 들어, 수소와 아세트산은 철 세균이나 황산염 환원 세균도 이용할 수 있는 기질이다. 어떤 미생물이 우세하게 될지는 주변 환경에 존재하는 철 이온이나 황산 이온의 농도에 따라 달라진다. 일반적으로 철이나 황산 이온이 풍부하면 각각 철 세균이나 황산염 환원 세균이 에너지 획득에 유리하여 우점하게 되고, 이러한 이온이 부족한 환경에서 비로소 메테인 세균이 활발하게 증식할 수 있다.
또한 메테인 세균은 다른 미생물과 공생 관계를 맺기도 한다. 예를 들어, 저급 지방산을 분해하여 아세트산과 수소를 만드는 반응은 그 자체로는 에너지를 흡수하는 흡에르곤 반응(ΔG0’ > 0)이라 자발적으로 일어나기 어렵다. 하지만 메테인 세균이 공생하면서 생성된 수소와 아세트산을 지속적으로 소모하여 메탄으로 전환해주면(이 과정은 발에르곤 반응, ΔG0’ < 0), 전체 유기물 분해 반응이 에너지를 방출하며 원활하게 진행될 수 있게 된다. 이러한 공생은 소의 반추위나 늪, 해저 퇴적물 등 다양한 혐기성 환경에서 유기물 분해를 촉진하는 중요한 메커니즘이다.
3. 1. H₂/CO₂ 메테인 생성
메테인 생성균은 수소(H₂)와 이산화 탄소(CO₂)를 이용하여 메탄을 만드는 메탄 생성 과정을 수행한다.[40] 이 외에도 아세테이트, 포름산염, 메탄올, 메틸아민 등 다양한 기질을 사용할 수 있지만, H₂/CO₂를 이용하는 경로는 중요한 메탄 생성 방식 중 하나이다. 각기 다른 메탄 생성 반응은 고유한 효소와 조효소 세트에 의해 촉매된다. 반응 메커니즘과 에너지 역학은 반응 종류에 따라 다르지만, 모든 반응은 ATP 합성을 유도하는 이온 농도 기울기를 생성하여 에너지를 얻는 데 기여한다.[41] H₂/CO₂ 메탄 생성의 전체 반응식과 표준 자유 에너지 변화(∆G˚’)는 다음과 같다.:
H₂/CO₂를 이용하여 메탄을 생성하는 대표적인 메테인 세균으로는 ''Methanosarcina barkeri'', ''Methanobacterium thermoautotrophicum'', ''Methanobacterium wolfei'' 등이 있으며, 이들은 주로 산소가 없는 혐기성 환경에서 발견된다.[40][42][43][44]
H₂/CO₂ 메탄 생성 과정은 여러 단계로 이루어진다.
1. CO₂ 활성화 및 포르밀기 형성: 초기 단계에서 CO₂는 메타노푸란(MF)이라는 조효소에 결합하고 수소(H₂)를 이용하여 포르밀-MF로 환원된다. 이 과정은 에너지를 흡수하는 흡열 반응(∆G˚’= +16 kJ/mol)이며, 포르밀-MF 탈수소 효소에 의해 촉매된다.[40]
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2. 포르밀기 전달: 포르밀-MF에 붙어 있던 포르밀기는 다른 조효소인 테트라히드로메타노프테린(H4MPT)으로 옮겨진다. 이 반응은 포르밀트랜스퍼라제라는 효소에 의해 촉매되어 포르밀-H4MPT를 형성한다.[40]
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3. 단계적 환원: 포르밀-H4MPT는 먼저 메테닐-H4MPT로 환원된 후, 물 분자가 첨가되는 가수분해와 두 번의 환원 단계를 거쳐 최종적으로 메틸-H4MPT가 된다. 이 두 단계의 환원 과정은 조효소 F420의 도움을 받는다. 조효소 F420은 전자를 제공하고 산화되며, 소모된 전자는 다시 수소(H₂)로부터 공급받는다. 이 단계는 메틸렌 H4MPT 탈수소 효소에 의해 촉매된다.[40][45]
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4. 메틸기 전달: 메틸-H4MPT에 있는 메틸기는 메틸트랜스퍼라제 효소의 작용으로 조효소 M(HS-CoM)으로 전달되어 메틸-조효소 M(CH₃-S-CoM)을 형성한다.[46][47]
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5. 최종 메탄 생성 및 조효소 재생: 마지막 단계는 메틸-조효소 M 환원 효소와 두 개의 다른 조효소, 즉 N-7 메르캅토헵타노일트레오닌 인산염(HS-HTP)과 조효소 F430이 관여한다. HS-HTP는 메틸-조효소 M에 전자를 제공하여 메탄(CH₄)을 생성시키고, 자신은 조효소 M과 혼합 이황화물(CoM-S-S-HTP)을 형성한다.[48] 조효소 F430은 이 반응을 촉매하는 환원 효소의 보조 인자 역할을 한다. 마지막으로, 수소(H₂)가 혼합 이황화물에 전자를 제공하여 조효소 M(HS-CoM)과 HS-HTP를 원래 상태로 재생시킨다.[49]
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3. 2. 아세트산 메테인 생성
아세트산은 수소와 함께 자연 환경에서 메테인 세균이 이용하는 매우 중요한 기질 중 하나이다. 모든 메테인 세균이 아세트산을 이용할 수 있는 것은 아니지만, ''Methanosarcinacea'' 강에 속하는 메테인 세균들은 아세트산 외에도 일산화 탄소, 메탄올, 메틸아민 등 다양한 탄소원을 메탄으로 전환할 수 있다.아세트산을 이용한 메테인 생성 반응(아세트산 자화 반응)은 다음과 같다.
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이 반응의 표준 자유 에너지 변화(ΔG0’)는 pH 7 조건에서 몰당 −31 kJ이다 (ΔG0’ = −31 kJ/mol). 이는 수소를 이용하는 경우(ΔG0’ = −135 kJ/mol)보다는 에너지 효율이 낮다.
혐기 환경에서는 아세트산을 두고 메테인 세균과 다른 미생물 간의 경쟁이 발생한다. 예를 들어, 황산염 환원 세균은 아세트산을 이용하여 황산염을 환원시키는데, 이때 에너지 획득량(ΔG0’ = −47 kJ/mol)이 메테인 세균보다 약간 더 높다. 따라서 황산 이온이 풍부한 환경에서는 황산염 환원 세균이 아세트산 이용 경쟁에서 우위를 점하게 된다. 만약 철 이온이 존재한다면, 철 세균이 훨씬 높은 에너지 효율(ΔG0’ = −809 kJ/mol)로 아세트산을 이용할 수 있어 철 세균이 우점하게 된다. 또한 수소와 탄산염으로부터 아세트산을 생성하는 아세트산 생성 세균도 경쟁 상대가 될 수 있다. 결과적으로 철이나 황산 이온이 부족한 환경에서 메테인 세균이 아세트산을 주로 이용할 수 있게 된다.
또한, 메테인 세균은 저급 지방산을 분해하여 아세트산을 생성하는 세균과 공생 관계를 형성하기도 한다. 예를 들어, 부티르산을 분해하여 아세트산과 수소를 만드는 반응은 그 자체로는 에너지를 흡수하는 흡에르곤 반응(ΔG0’ = +48.3 kJ/mol)이어서 자발적으로 일어나기 어렵다.
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하지만 메테인 세균이 공생하면서 생성된 아세트산과 수소를 지속적으로 소모하여 메탄을 생성하면, 전체 과정은 발에르곤 반응으로 전환되어 에너지를 방출하며 진행될 수 있다. 메테인 세균은 아세트산(ΔG0’ = −31 kJ/mol)과 수소(ΔG0’ = −135 kJ/mol)를 이용하여 메탄을 생성한다.
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결과적으로, 부티르산 2분자가 분해되어 메탄 1분자와 아세트산 4분자가 생성되는 전체 공생 반응의 표준 자유 에너지 변화는 ΔG0’ = −38.4 kJ/mol ((+48.3 kJ/mol × 2) + (−135 kJ/mol))가 되어 자발적으로 진행될 수 있다.
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이러한 공생 관계는 혐기 환경에서 유기물 분해를 촉진하는 중요한 메커니즘이다.
3. 3. 기타 기질
메테인 세균은 매우 다양한 환경에서 살아갈 수 있지만, 메탄 생성을 통해 에너지를 얻는 데 사용하는 기질의 종류는 비교적 제한적이다. 가장 일반적인 기질은 이산화 탄소(CO2)이다.하지만 일부 메테인 세균은 이산화 탄소 외에도 다양한 탄소원을 메탄으로 바꾸는 능력을 가지고 있다. 예를 들어, ''Methanosarcinacea'' 강에 속하는 메테인 세균들은 일산화 탄소, 아세트산, 메탄올, 메탄티올, 메틸아민 등을 기질로 사용할 수 있다. 유정에서 발견된 ''Methanolobus siciliae''와 같은 종은 다이메틸 설파이드를 이용하기도 한다. 또한, ''Methanogenium organophilum''은 1급 알코올인 에탄올이나 1-프로판올을 사용할 수 있다.
과거에는 ''Methanobacterium omelianskii''라는 세균이 에탄올로부터 메탄을 직접 생성한다고 알려졌었다. 그러나 나중에 이 과정은 에탄올을 수소와 이산화 탄소로 분해하는 다른 세균(S균)과의 공생을 통해 이루어진다는 사실이 밝혀졌다. 현재 이 메테인 세균은 ''Methanobacterium bryantii''로 이름이 바뀌었다.
이 외에도 2급 알코올 (아이소프로판올, 시클로펜탄올, 2-부탄올 등)을 전자 공여체로 사용하거나, 메톡시기를 가진 방향족 화합물을 이용하는 메테인 세균도 존재한다.[75]
4. 기질 경쟁 및 공생
메테인 세균은 다양한 환경에서 발견되지만, 메테인 생성 과정에서 에너지를 얻기 위해 사용하는 기질의 종류는 비교적 제한적이다. 가장 일반적인 기질은 이산화 탄소(CO₂)이다.
하지만 일부 메테인 세균은 이산화 탄소 외에도 다양한 탄소 화합물을 메테인으로 전환할 수 있다. 예를 들어, ''Methanosarcinacea'' 강에 속하는 메테인 세균들은 일산화 탄소(CO), 아세트산(CH3COOH), 메탄올(CH3OH), 메탄티올(CH3SH), 메틸아민(CH3NH₂) 등을 기질로 사용할 수 있다. 유정에서 분리된 ''Methanolobus siciliae''와 같은 종은 다이메틸 설파이드((CH3)₂S)를 이용하기도 한다. 또한, ''Methanogenium organophilum''은 1급 알코올인 에탄올(C₂H₅OH)이나 1-프로판올(C₃H₇OH)을 사용할 수 있다. 과거에는 ''Methanobacterium omelianskii''가 에탄올로부터 직접 메테인을 생성한다고 알려졌으나, 이는 에탄올을 수소(H₂)와 이산화 탄소로 분해하는 세균인 'S균'과의 공생 관계임이 밝혀졌고, 해당 메테인 세균은 현재 ''Methanobacterium bryantii''로 재명명되었다. 이 외에도 2급 알코올(아이소프로판올, 시클로펜탄올, 2-부탄올 등)이나 메톡시기를 포함한 방향족 화합물을 이용하는 메테인 세균도 존재한다.[75]
자연 환경, 특히 산소가 없는 혐기 환경에서 메테인 세균이 주로 이용하는 기질은 수소(H₂)와 아세트산(CH3COOH)이다. 이 두 물질은 혐기성 미생물 세계에서 매우 중요한 에너지원이기 때문에, 메테인 세균은 이 기질을 두고 다른 진정세균들과 경쟁해야 한다. 수소는 주로 혐기성 세균이 유기산 등을 분해하며 탈수소 반응을 통해 생성하거나, 히드로게노솜을 가진 곰팡이나 원생동물에 의해 발생한다. 심해 열수 분출공과 같은 특수한 환경을 제외하면, 대부분의 혐기 환경에서 수소는 생물학적 활동의 결과물이다. 아세트산은 짧은 사슬 지방산의 분해를 포함한 발효 과정의 주요 최종 산물 중 하나이다.
수소와 아세트산을 이용하는 경쟁자로는 철(III) 이온(Fe³⁺)을 전자 수용체로 사용하는 철 세균, 황산 이온(SO₄²⁻)을 전자 수용체로 사용하는 황산염 환원 세균, 그리고 수소와 탄산염으로부터 아세트산을 생성하는 아세트산 생성 세균 등이 있다. 에너지 획득 효율 면에서 차이가 있기 때문에, 환경 조건에 따라 특정 미생물 그룹이 우점하게 된다. 예를 들어, 철(III) 이온이나 황산 이온이 풍부한 환경에서는 각각 철 세균이나 황산염 환원 세균이 메테인 세균보다 유리하다. 따라서 메테인 세균은 일반적으로 이러한 전자 수용체가 부족하고 수소가 풍부한 특정 환경에서 활발하게 증식하는 경향을 보인다.
하지만 이러한 기질 경쟁 환경 속에서도 메테인 세균은 다른 미생물과의 공생을 통해 생존 영역을 확보하기도 한다. 특정 유기물을 분해하는 과정에서 에너지 효율 문제로 단독으로는 생장이 어려운 세균과 협력하여, 서로에게 이익이 되는 관계를 형성하는 경우가 대표적이다. 이러한 공생 관계는 메테인 세균의 중요한 생존 전략 중 하나이며, 혐기 환경에서의 물질 순환에 기여한다.
4. 1. 공생
메테인 세균은 수소(H2)와 아세트산(CH3COOH)을 주요 기질로 이용하여 메테인을 생성한다. 이 두 물질은 자연 환경, 특히 산소가 없는 혐기 환경에서 중요한 에너지원이기 때문에, 메테인 세균은 이 기질을 두고 몇몇 진정세균과 경쟁 관계에 놓인다. 또한, 짧은 사슬 지방산을 분해하여 아세트산을 만드는 세균과 공생 관계를 맺기도 하는데, 이는 다른 고세균인 고도호염균이나 호열성 고세균과는 다른 생태적 특징이다.수소는 주로 혐기성 세균이 유기산을 전자 공여체로 사용하여 탈수소 반응을 일으킬 때 생성된다. 히드로게노솜이라는 세포 소기관을 가진 곰팡이나 원생동물도 수소를 발생시킨다. 심해 열수 분출공처럼 지구과학적 과정으로 수소가 만들어지는 특수한 경우도 있지만, 대부분의 혐기 환경에서는 생물 활동의 결과로 수소가 발생한다고 볼 수 있다. 아세트산은 짧은 사슬 지방산 분해를 포함한 발효 과정의 최종 단계에서 주로 생성되며, 발효를 통해 얻을 수 있는 에너지 중 가장 많은 양을 제공한다(포도당 한 분자가 완전히 발효될 경우, pH 7 조건에서 ΔG0′ = −946 kJ/mol).
수소와 아세트산을 이용하는 생물은 메테인 세균 외에도 여럿 있다. 대표적으로 철(III) 이온(Fe3+)을 전자 수용체로 사용하는 철 세균, 황산 이온(SO42-)을 전자 수용체로 사용하는 황산염 환원 세균(황산염 호흡), 그리고 수소와 탄산염으로부터 아세트산을 생성하는 Acetogenic bacteria|아세토젠eng(아세트산 생성 세균) 등이 있다. 각 생물이 기질 1몰당 얻는 에너지 양(ΔG0′)을 비교하면 다음과 같다.
생물 그룹 | 전자 공여체 | 에너지 획득량 (ΔG0′, kJ/mol) |
---|---|---|
철 세균 | 수소 | −914 |
아세트산 | −809 | |
황산염 환원 세균 | 수소 | −152 |
아세트산 | −47 | |
메테인 세균 | 수소 | −135 |
아세트산 | −31 |
표에서 볼 수 있듯이, 에너지 획득 효율은 철 세균이 압도적으로 높다. 따라서 전자 수용체로 철(III) 이온이 풍부한 환경에서는 철 세균이 우점하게 된다. 마찬가지로 황산 이온이 풍부하면 황산염 환원 세균이 우세하다. 결과적으로 메테인 세균은 철(III) 이온과 황산 이온이 모두 부족하고 수소가 풍부한 환경에서 비로소 활발하게 증식할 수 있다. 하지만 다른 세균이나 원충과 메테인 세균이 공생하는 경우에는 상황이 달라질 수 있다.
공생 관계는 특히 혐기 조건에서 유기산을 분해하는 효율이 낮은 문제를 해결하는 데 중요하다. 예를 들어, 짧은 사슬 지방산인 부티르산(butyrate)을 혐기적으로 분해하는 반응은 다음과 같다.
: CH3CH2CH2COO- + 2H2O → 2CH3COO- + H+ + 2H2
이 반응 자체는 에너지를 흡수하는 흡에르곤 반응으로, 표준 자유 에너지 변화(ΔG0′)가 +48.3 kJ/mol이다. 즉, 반응 결과물인 아세트산이나 수소의 농도가 매우 낮게 유지되지 않으면 자발적으로 일어나기 어렵다. 바로 이 지점에서 메테인 세균이 중요한 역할을 한다. 메테인 세균은 아세트산과 수소를 소모하여 메테인(CH4)을 만드는 다음 반응들을 통해 에너지를 얻는다.
: CH3COO- + H2O → CH4 + HCO3- (ΔG0′ = −31 kJ/mol)
: 4H2 + HCO3- + H+ → CH4 + 3H2O (ΔG0′ = −135 kJ/mol, 수소 자화)
메테인 세균이 수소를 빠르게 소모해주면(수소 자화), 부티르산 분해 반응의 생성물 농도가 낮게 유지되어 반응이 원활하게 진행될 수 있다. 부티르산 분해 반응(2 몰)과 메테인 세균의 수소 자화 반응(1 몰)을 합치면 전체 반응식은 다음과 같다.
: 2CH3CH2CH2COO- + 2H2O + CO2 → 4CH3COO- + 2H+ + CH4
이 전체 반응의 표준 자유 에너지 변화는 부티르산 분해(+48.3 kJ/mol × 2 = +96.6 kJ/mol)와 수소 자화(−135 kJ/mol)를 합하여 ΔG0′ = −38.4 kJ/mol이 된다. 전체적으로 에너지를 방출하는 발에르곤 반응이 되어, 두 종류의 미생물은 서로에게 이익을 주며 공생 관계를 유지할 수 있다.
5. 분포
혐기성 환경에서 메테인 생성균은 다른 형태의 혐기성 호흡 과정에서 생성된 과도한 수소와 발효 생성물을 제거하며 중요한 생태학적 역할을 수행한다.[14] 이들은 일반적으로 산소, 질산염, 삼산화철, 황산염과 같은 다른 전자 수용체가 고갈된 환경에서 번성한다.
메테인 생성균은 습지, 논 토양, 다양한 동물의 소화관(반추동물, 절지동물, 인간 등),[15][16][17] 폐수 처리장, 매립지, 깊은 해양 퇴적물, 열수 분출공 등 매우 광범위한 환경에 분포한다.[18] 대부분의 서식지는 극한 환경이 아니지만, ''Methanopyrus kandleri'', ''Methanothermobacter marburgensis'', ''Methanocaldococcus jannaschii''와 같은 호열성 세균이나 ''Methanobrevibacter smithii'', ''Methanobrevibacter ruminantium'' 같은 중온성 세균 등 다양한 온도 조건에 적응한 종들이 존재한다. 생육 가능한 온도는 최저 15°C(''Methanogenium frigidum'')에서 최고 105°C(''Methanopyrus kandleri'' Strain 116)까지 다양하며, 염분 농도 역시 담수 환경부터 고염도 환경까지 폭넓게 적응하여 ''Methanohalobium evestigatum''과 같은 고도 호염성 종도 발견된다.
메테인 생성균은 깊은 현무암 암석 지대나 해령 근처의 올리빈 사문암화 반응, 물의 열분해 및 방사선 분해 등을 통해 수소를 얻기도 한다. 대륙 연안 퇴적물 등에서는 유기 탄소 재광물화에 기여하며, 특정 조건에서는 메탄 클라트레이트 형성에 관여한다.[19][20]
또한, 그린란드의 깊은 얼음 속이나 뜨겁고 건조한 사막 토양과 같은 극한 환경에서도 발견되며,[21][22][23] 깊은 지하 서식지에서 가장 흔한 고세균으로 알려져 있다. 일부 연구에서는 -40°C ~ 145°C 온도 범위에서 생존 및 대사 활동이 가능함을 시사했다.[21]
화성 대기의 메탄 존재와 관련하여 화성에서의 메테인 생성균 존재 가능성이 제기되기도 했다.[24] NASA의 큐리오시티 로버가 메탄을 감지한 것은 이러한 가능성을 뒷받침하는 증거로 여겨진다.[25]
생태적으로는 메탄을 기질로 사용하는 혐기성 메탄 산화균과 밀접하게 연관되어 있다.[26] 대부분 자가영양 생산자이지만, 아세트산을 이용하는 일부는 화학영양생물로 분류된다. 동물 소화관 내에서는 다른 미생물의 발효 산물을 이용하여 장내 환경 균형 유지에 기여하며, 주로 Methanobacteriota, Thermoplasmatota, Halobacteriota 문에 속하는 종들이 발견된다.[27][28][29]
5. 1. 담수 퇴적물
담수의 퇴적물 중 (혐기성 소화조, 호수, 논)은 메테인 세균의 주요 서식 환경 중 하나이다. 이곳은 발효성 진정세균의 활동이 활발하며, 황산 이온이 부족한 특징을 가진다. 이러한 조건 때문에 유기물은 대부분 이산화 탄소, 포름산, 아세트산까지 분해된다. 또한 유기산을 전자 공여체로 사용하여 수소도 발생하므로, '''메탄균의 생육 장소로는 이상적'''이다. 특히 담수 환경에서 발생하는 메탄 생성의 약 60%는 아세트산 경로를 통해 이루어지며, 나머지 40%는 수소와 이산화 탄소 경로를 거친다.많은 메탄균이 호수나 혐기성 소화조에서 분리되었지만, 잠재적인 메탄 발생원으로 여겨지는 논에서 분리된 종은 상대적으로 적다. ''Methanobacterium'' spp.와 ''Methanoculleus'' spp. 등이 논에서 발견된 대표적인 예이다. 논 토양은 농한기에 건조 상태로 놓이는 경우가 많아, 절대 혐기성인 메탄균 중에서도 특히 산소 내성이 높은 종이 살아남아 우세해지고, 이로 인해 분리되는 비율이 높다는 설명이 있다. 하지만 최근에는 RICE 클러스터라고 불리는, 기존 방법으로는 배양이 어려웠던 논 유래 메탄균들이 새롭게 분리되고 있다.
5. 2. 해양
메테인 생성균은 해양 환경에도 널리 분포한다. 특히 대륙 연안 퇴적물이나 퇴적률과 유기물 함량이 높은 수생 퇴적물에서 유기 탄소를 재광물화하는 중요한 역할을 한다. 깊은 해령 근처의 현무암 암석 지대에서는 올리빈의 사문암화 반응을 통해 생성되는 수소를 이용하기도 하는데, 이는 로스트 시티 같은 열수분출공 지역에서 관찰되었다. 물의 열분해나 방사선 분해 역시 해양 환경에서 메테인 생성균이 이용할 수 있는 수소 공급원이 될 수 있다.해양 환경은 황산 이온이 풍부하다는 특징이 있다. 이 때문에 퇴적물에서 생성되는 수소, 포름산, 아세트산 등은 대부분 황산 환원 세균과의 경쟁에서 밀려 그들에 의해 소비된다. 따라서 해양의 메테인 생성균은 황산 환원 세균이 잘 이용하지 않는 다른 기질, 예를 들어 메틸아민이나 황화 디메틸 등을 주로 이용하여 생육한다. 황화 디메틸의 경우, 농도가 낮을 때는(2 μM 이하) 황산 환원 세균이 주로 사용하지만, 농도가 높아지면 ''Methanolobus''속과 같은 메테인 생성균이 우선적으로 이용하게 된다.
해양 퇴적물에서 메테인 생성균의 활동으로 생성된 생물 기원 메탄은 특정 압력과 온도 조건 하에서 메탄 클라트레이트 형태로 대규모로 축적될 수 있다.[19] 이 메탄 클라트레이트는 대륙 연안 퇴적물에 저장된 유기 탄소의 상당 부분을 차지하며, 강력한 온실 가스인 메탄의 주요 저장고로서 기후 변화와 관련하여 주목받고 있다.[20]
5. 3. 반추위 및 흰개미 후장
반추위와 흰개미의 후장은 메테인 세균이 서식하는 대표적인 환경 중 하나이다.[15][16][17] 이들 동물의 소화관 내부는 혐기성 환경이며, 다른 미생물에 의한 발효 과정에서 다양한 물질이 생성된다.반추위에서는 발효에 의해 생성된 아세트산이나 프로피온산과 같은 지방산은 동물의 장 점막을 통해 흡수된다. 따라서 메테인 세균은 주로 남은 수소와 이산화 탄소, 그리고 개미산을 기질로 이용하여 메테인을 생성한다. 반추위에서 발생하는 메테인 중 약 80%는 수소와 이산화탄소에서 유래하며, 나머지 20%는 개미산에서 유래하는 것으로 알려져 있다. 반추동물에서 흔히 발견되는 메테인 세균으로는 ''Methanobrevibacter ruminantium'' 등이 있다.
흰개미의 후장 역시 반추위와 유사한 환경이다. 발효 산물인 아세트산은 흰개미가 직접 흡수하여 에너지원으로 사용한다. 따라서 메테인 세균은 주로 수소와 이산화 탄소를 이용하여 메테인을 생성한다. 하지만 모든 흰개미에서 메테인 세균이 우세한 것은 아니다. 일부 흰개미 종류의 장내 환경에서는, 메테인 생성 반응보다 에너지 효율이 더 높은 아세트산 생성균이 수소와 이산화 탄소를 이용하여 아세트산을 만드는 반응이 우세하게 일어나기도 한다. 즉, 흰개미의 종류에 따라 장내에서는 메테인 세균 대신 아세트산 생성균이 우점종이 되는 경우가 많다.
6. 분류
메테인 생성균은 처음에는 세균으로 여겨졌는데, 이는 DNA 염기서열 분석 및 PCR과 같은 분자 기술이 도입되기 전에는 고세균과 세균을 구별하는 것이 불가능했기 때문이다. 1977년 칼 우즈가 고세균 도메인을 도입한 이후,[56] 메테인 생성균은 오랫동안 단계통군으로 여겨졌으며, 이후 유리아키오타 문으로 명명되었다. 그러나 다양한 환경에 대한 집중적인 연구를 통해 메테인 생성균 계열 내에 메테인 생성 능력이 없는 계통이 점점 더 많다는 것이 밝혀졌다.
환경 시료에서 직접 게놈 염기서열을 분석하는 메타게노믹스 기술의 발달로 유리아키오타 문 밖에서 처음으로 메테인 생성균으로 추정되는 계통이 발견되었다. 처음 발견된 것은 테르모프로테오타 문 내의 바티아키아 강이었다.[57] 하지만 이후 이 계열은 메테인 생성균이 아니라, 메테인 생성의 특징적인 유전자인 메틸-CoM 환원효소(McrABG)와 유사하지만 매우 다른 효소인 Acr을 이용하여 알칸을 산화한다는 것이 밝혀졌다.[58] 러시아 연안 호수 퇴적물에서 최초로 분리된 ''바티아키움 타르둠''은 이전에 메타게노믹 연구를 통해 예측된 대로 방향족 화합물과 단백질을 대사하는 것으로 나타났다.[59][60][61][62] 그럼에도 불구하고, McrABG 유전자의 존재를 근거로 유리아키오타 밖에서 더 많은 새로운 추정 메테인 생성균이 발견되었다.
예를 들어, 메테인 생성균은 테르모프로테오타 문(메타노메틸알레스목, 코라키알레스목, 메타노수소알레스목, 네자아키알레스목)과 메타노박테리오타_B 문(메타노파스티디오알레스목)에서도 발견되었다. 또한, 순수 배양을 통해 새로운 메테인 생성균 계통이 일부 분리되면서, 우드-융달 경로와는 다른 새로운 유형의 메테인 생성 방식인 H₂ 의존적 메틸 환원 메테인 생성이 발견되었다. 예를 들어, 2012년에는 테르모플라스마토타 문의 메타노플라스마탈레스목이 메테인 생성균의 일곱 번째 목으로 기술되었다.[63] 이후 이 목은 인간 장에서 분리된 ''메타노마실리코쿠스 루미니엔시스''를 기반으로 메타노마실리코칼레스목으로 이름이 변경되었다.[64][65]
할로박테리오타 문의 또 다른 새로운 계열인 메타노나트로나키알레스목은 2017년 시베리아의 알칼리성 염호에서 발견되었다.[66][67] 이들 역시 H₂ 의존적 메틸 환원 메테인 생성을 사용하지만, 흥미롭게도 거의 완전한 우드-융달 경로를 가지고 있다. 그러나 MtrA-H 복합체가 검출되지 않아 McrABG와 연결되지는 않는다.[68][69]
메테인 생성균의 분류는 이러한 고세균의 진화를 반영하며, 일부 연구에서는 마지막 고세균 공통 조상이 메테인 생성균이었을 가능성을 제시하고 있다.[70] 만약 이것이 사실이라면, 많은 고세균 계열이 메탄 생성 능력을 잃고 다른 유형의 대사로 전환했음을 시사한다. 현재, 분리된 대부분의 메테인 생성균은 세 개의 고세균 문 중 하나에 속한다(분류 GTDB 릴리스 220 기준): 할로박테리오타, 메타노박테리오타, 테르모플라스마토타. 국제 원핵생물 명명 규약에 따라,[71] 이 세 문은 모두 메타노박테리아티 계(Kingdom)에 속한다.[72][73] 총 150종 이상의 메테인 생성균이 배양을 통해 알려져 있으며, 일부는 둘 이상의 균주로 대표된다.[74]
- 문 할로박테리오타
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- 과 메타노셀라과
- 속 ''메타노셀라'' Sakai 외 2008
- ''메타노셀라 팔루디콜라'' Sakai ''et al.'' 2008 (기준 종)
- ''메타노셀라 아르보리자에'' Sakai ''et al.'' 2010
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- 목 메타노미크로비알레스
- 과 메타노칼쿨라과 Zhilina ''et al.'' 2014
- 과 메타노코르푸스큘라과 Zellner ''et al.'' 1989
- 속 ''메타노코르푸스쿨룸'' Zellner ''et al.'' 1988
- ''메타노코르푸스쿨룸 파르붐'' Zellner ''et al.'' 1988 (기준 종)
- ''메타노코르푸스쿨룸 바바리쿰'' Zellner ''et al.'' 1989
- ''메타노코르푸스쿨룸 라브레아눔''
- ''메타노코르푸스쿨룸 시넨세'' Zellner ''et al.'' 1989
- 과 메타노미크로비아과 Balch 및 Wolfe 1981
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- ''메타노쿨레우스 부르겐시스'' 수정. (Ollivier ''et al.'' 1986) Maestrojuán ''et al.'' 1990 (기준 종)
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- ''메타노쿨레우스 팔몰레이'' Zellner ''et al.'' 1998
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- ''메타노제니움 마리눔'' Chong ''et al.'' 2003
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- ''메타노폴리스 리미나탄스'' (Zellner ''et al.'' 1990) Zellner ''et al.'' 1999
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- 속 ''메타니미크로코쿠스'' 수정. Sprenger ''et al.'' 2000
- ''메타니미크로코쿠스 블라티콜라'' 수정. Sprenger ''et al.'' 2000
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- ''메타노코코이데스 메틸루텐스'' Sowers 및 Ferry 1985 (기준 종)
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- ''메타노코코이데스 불카니'' L'Haridon ''et al.'' 2014
- 속 ''메타노할로비움'' Zhilina 및 Zavarzin 1988
- ''메타노할로비움 에베스티가툼'' 수정. Zhilina 및 Zavarzin 1988 (기준 종)
- 속 ''메타노할로필루스'' Paterek 및 Smith 1988
- ''메타노할로필루스 마히이'' Paterek 및 Smith 1988 (기준 종)
- ''메타노할로필루스 할로필루스'' (Zhilina 1984) Wilharm ''et al.'' 1991
- ''메타노할로필루스 레비할로필루스'' Katayama ''et al.'' 2014
- ''메타노할로필루스 포르투칼렌시스'' Boone ''et al.'' 1993
- ''메타노할로필루스 프로푼디'' L'Haridon ''et al.'' 2021
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- ''메타놀로부스 틴다리우스'' König 및 Stetter 1983 (기준 종)
- ''메타놀로부스 붐바옌시스'' Kadam ''et al.'' 1994
- ''메타놀로부스 첼룽푸이아누스'' Wu 및 Lai 2015
- ''메타놀로부스 할로톨레란스'' Shen ''et al.'' 2020
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- ''메타놀로부스 프로푼디'' Mochimaru ''et al.'' 2009
- ''메타놀로부스 프시크로톨레란스'' Chen ''et al.'' 2018
- ''메타놀로부스 세디미니스'' Zhou ''et al.'' 2023
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- ''메타놀로부스 불카니'' Stetter ''et al.'' 1989
- ''메타놀로부스 진데리'' Doerfert ''et al.'' 2009
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- ''메타노메틸로보란스 홀란디카'' Lomans ''et al.'' 2004 (기준 종)
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- ''메타노메틸로보란스 우포넨시스'' Cha ''et al.'' 2014
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- ''메타노살숨 질리네'' (Mathrani ''et al.'' 1988) Boone 및 Baker 2002 (기준 종)
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- ''메타노트릭스 하룬디나세아'' (Ma ''et al.'' 2006) Akinyemi ''et al.'' 2021
- ''메타노트릭스 테르모아세토필라'' 수정. Nozhevnikova 및 Chudina 1988
- "''Candidatus'' 메타노트릭스 파라독사" 수정. Angle ''et al.'' 2017
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- ''메테르미코쿠스 쉥리엔시스'' Cheng ''et al.'' 2007 (기준 종)
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- 강 메타노박테리아
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- 과 메타노박테리아과
- 속 ''메타노박테리움'' Kluyver 및 van Niel 1936
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- ''메타노박테리움 브라이언티이''
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- ''메타노브레비박터 루미난티움'' (Smith 및 Hungate 1958) Balch 및 Wolfe 1981 (기준 종)
- ''메타노브레비박터 아시디두란스'' Savant ''et al.'' 2002
- ''메타노브레비박터 아르보리필루스'' 수정. (Zeikus 및 Henning 1975) Balch 및 Wolfe 1981
- ''메타노브레비박터 보비스코레아니'' Lee ''et al.'' 2013
- ''메타노브레비박터 커바투스'' Leadbetter 및 Breznak 1997
- ''메타노브레비박터 커티큘라리스'' Leadbetter 및 Breznak 1997
- ''메타노브레비박터 필리포르미스'' Leadbetter ''et al.'' 1998
- ''메타노브레비박터 갓찰키이'' Miller 및 Lin 2002
- ''메타노브레비박터 밀레라이'' Rea ''et al.'' 2007
- ''메타노브레비박터 올레이에'' Rea ''et al.'' 2007
- ''메타노브레비박터 오랄리스'' Ferrari ''et al.'' 1995
- ''메타노브레비박터 스미티이'' Balch 및 Wolfe 1981
- ''메타노브레비박터 타우에리'' Miller 및 Lin 2002
- ''메타노브레비박터 보에세이'' Miller 및 Lin 2002
- ''메타노브레비박터 볼리니이'' Miller 및 Lin 2002
- "''메타노브레비박터 마실리엔세''" Huynh ''et al.'' 2015
- "''Candidatus'' 메타노브레비박터 인테스티니" Chibani ''et al.'' 2022
- 속 ''메타노스파이라'' Miller 및 Wolin 1985
- ''메타노스파이라 스타트마나에'' 수정. Miller 및 Wolin 1985 (기준 종)
- ''메타노스파이라 쿠니쿨리'' Biavati ''et al.'' 1990
- 속 ''메타노테르모박터'' Wasserfallen ''et al.'' 2000
- ''메타노테르모박터 테르마우토트로피쿠스'' 수정. (Zeikus 및 Wolfe 1972) Wasserfallen et al. 2000 (기준 종)
- ''메타노테르모박터 크리날레'' Cheng et al. 2012
- ''메타노테르모박터 데플루비이'' (Kotelnikova et al. 1994) Boone 2002
- ''메타노테르모박터 마르부르겐시스'' Wasserfallen et al. 2000
- ''메타노테르모박터 테네브라룸'' Nakamura et al. 2013
- ''메타노테르모박터 테르모플렉수스'' (Kotelnikova et al. 1994) Boone 2002
- ''메타노테르모박터 테르모필루스'' (Laurinavichus et al. 1990) Boone 2002
- ''메타노테르모박터 볼피이'' 수정. (Winter et al. 1985) Wasserfallen et al. 2000
- 과 메타노테르마과
- 속 ''메타노테르무스'' Stetter 1982
- ''메타노테르무스 페르비두스'' Stetter 1982 (기준 종)
- 강 메타노피리
- 목 메타노피랄레스
- 과 메타노피라과
- 속 ''메타노피루스'' Kurr ''et al.'' 1992
- ''메타노피루스 칸들러리'' Kurr ''et al.'' 1992 (기준 종)
- 강 메타노코키
- 목 메타노코칼레스
- 과 메타노코쿠스과 Balch 및 Wolfe 1981
- 속 ''메타노코쿠스'' Kluyver 및 van Niel 1936
- ''메타노코쿠스 바니엘리이'' Stadtman 및 Barker 1951 (기준 종)
- ''메타노코쿠스 에올리쿠스''
- ''메타노코쿠스 부르토니이''
- ''메타노코쿠스 충싱겐시스''
- ''메타노코쿠스 델타에''
- ''메타노코쿠스 자나시이''
- ''메타노코쿠스 마리팔루디스''
- 속 ''메타노페르비디코쿠스''
- ''메타노페르비디코쿠스 아비시'' Sakai ''et al.'' 2019 (기준 종)
- 속 ''메타노테르모코쿠스''
- ''메타노테르모코쿠스 테르몰리토트로피쿠스'' (Huber ''et al.'' 1984) Whitman 2002 (기준 종)
- 과 메타노칼도코쿠스과
- 속 ''메타노칼도코쿠스''
- ''메타노칼도코쿠스 자나시이'' (Jones ''et al.'' 1984) Whitman 2002 (기준 종)
- 속 ''메타노토리스''
- ''메타노토리스 이그네우스'' (Burggraf ''et al.'' 1990) Whitman 2002 (기준 종)
- 문 테르모플라스마토타
- 강 테르모플라스마타
- 목 메타노마실리코칼레스
- 과 메타노마실리코코쿠스과
- 속 ''메타노마실리코쿠스'' Dridi ''et al.'' 2012
- ''메타노마실리코쿠스 루미니엔시스'' Dridi ''et al.'' 2012 (기준 종)
- 과 메타노메틸로필라과
- 속 ''메타노메틸로필루스'' Borrel ''et al.'' 2024
- ''메타노메틸로필루스 알비'' Borrel ''et al.'' 2024 (기준 종)

메탄균의 분류에 관해서는 국제 메탄 생성균 분류 소위원회에 의해 1988년에 기준이 설정되었다. 아래는 최소 기준이다.
# 분리 생성의 확인 (순수성의 증명)
# 형태
# 계면활성제 민감성
# 그람 염색
# 운동성
# 콜로니 형태
# 메탄 생성 기질
# 메탄 생성의 확인
# 증식 속도
# 증식 조건 (배지의 조건: 온도, pH, NaCl 농도 등)
# GC 함량
이 외에도 권장되는 기준은 다음과 같다.
# 전자 현미경 사진
# 면역 형광
# 지질 분석
# 전체 단백질 (2차원 전기 영동)
# 16S rRNA 계통 분석 또는 DNA-DNA 분자 교잡법
메탄균으로 구성된 강은 메타노박테리움강,
7. 비교 유전체학 및 분자 표지자
비교 단백질체학 분석을 통해 메테인 생성 고세균에 특이적인 31개의 시그니처 단백질이 확인되었다. 이 단백질 대부분은 메테인 생성 과정과 관련이 있으며, 메테인 생성균을 식별하는 잠재적인 분자 표지자 역할을 할 수 있다. 또한, 모든 메테인 생성균에서 발견되는 10개의 단백질은 ''Archaeoglobus'' 속과 공유되어, 이 두 그룹이 관련되어 있음을 시사한다. 계통수에서 메테인 생성균은 단계통군을 형성하지 않고 일반적으로 세 개의 분기(clade)로 나뉘는데, 모든 메테인 생성균이 많은 수의 단백질을 공유하는 독특한 현상은 수평 유전자 전달 때문일 수 있다.[30] 최근에는 황화물 이동과 관련된 새로운 단백질이 메테인 생성 고세균과 연관되어 있음이 밝혀졌다.[31] 메테인 생성균의 특정 속(genus)을 더 자세히 구별하고 메테인 생성 대사의 새로운 경로를 밝히기 위해서는 추가적인 단백질체학 분석이 필요하다.
현대의 DNA 염기서열 분석 또는 RNA 염기서열 분석 기술은 여러 메테인 생성균 그룹에 특이적인 다양한 유전체 표지자를 밝혀냈다. 예를 들어, Methanoculleus 속에 속하는 9종의 메테인 생성균을 분리하여 분석한 결과, 9개 유전체 모두에서 최소 2개의 트레할로스 합성효소 유전자가 발견되었다.[32] 현재까지 이 유전자는 Methanoculleus 속에서만 관찰되었으므로, 이 속을 식별하는 표지자로 사용될 수 있다. 염기서열 분석 기술이 발전하고 데이터베이스에 유전체 데이터가 축적됨에 따라 더 많은 균주와 특성을 식별할 수 있게 되었지만, 여전히 많은 속은 연구가 부족한 상태이다. 예를 들어, 호염성(halophilic) 메테인 생성균은 연안 습지 생태계의 탄소 순환에 중요한 역할을 할 가능성이 있지만, 연구가 매우 미흡하다. 최근 한 연구에서는 황화물이 풍부한 해수에서 서식하는 ''Methanohalophilus'' 속의 새로운 균주를 분리했다. 흥미롭게도 이 균주의 유전체는 같은 속에 속하는 다른 분리 균주들(''Methanohalophilus mahii'', ''Methanohalophilus halophilus'', ''Methanohalophilus portucalensis'', ''Methanohalophilus euhalbius'')과 일부 차이를 보였다. 주요 차이점으로는 고도로 보존된 유전체 영역, 황 및 글리코겐 대사 관련 유전자, 바이러스 저항성 관련 유전자 등이 있다.[33]
미생물이 서식하는 환경과 관련된 유전체 표지자는 다른 많은 경우에도 관찰되었다. 한 연구에서는 수압파쇄 지역에서 발견된 메탄 생성 고세균의 유전체가 존재하는 수직 깊이에 따라 다르다는 것을 발견했다. 지하와 지표 유전체는 각기 다른 깊이 구역의 환경적 제약에 따라 변화했지만, 미세한 규모의 다양성도 함께 발견되었다.[34] 환경적 요인을 반영하는 유전체 표지자가 항상 배타적인 것은 아니다. 메테인 생성 열플라스마목(Thermoplasmatales) 고세균에 대한 조사 결과, 이 유기체들은 인간 및 동물의 장관에서도 발견되었다. 이 새로운 종들은 습지 토양과 같은 다른 메테인 생성 환경에서도 발견되었지만, 습지에서 분리된 그룹은 인간 및 동물의 장관에서 분리된 동일 그룹에는 없는 항산화 효소를 암호화하는 유전자를 더 많이 가지는 경향이 있었다.[35] 새로운 메테인 생성균 종을 식별하고 발견할 때, 유전체 차이가 매우 작더라도 연구 그룹이 이를 별개의 종으로 분리할 만큼 의미 있다고 판단하는 경우가 있다. 한 연구에서는 Methanocellales 목에 속하는 그룹을 대상으로 비교 유전체 연구를 수행했다. 세 균주는 원래 동일한 것으로 간주되었으나, 유전체 분리에 대한 상세한 분석을 통해 이전에 동일하다고 여겨졌던 유전체들 사이의 차이점이 드러났다. 유전자 복제 수의 차이가 관찰되었으며, 유전체 정보와 관련된 대사적 다양성도 확인되었다.[36]
유전체 시그니처는 고유한 메테인 생성균과 특정 환경 조건과 관련된 유전자를 식별할 수 있을 뿐만 아니라, 이들 고세균의 진화 과정을 더 잘 이해하는 데 도움을 준다. 일부 메테인 생성균은 산소가 있는 환경에 적극적으로 대처해야 한다. 항산화제 생산과 관련된 기능성 유전자가 메테인 생성균에서 발견되었으며, 특정 그룹은 이러한 유전체 특징이 풍부한 경향이 있다. 항산화 특성이 풍부한 유전체를 가진 메테인 생성균은 이러한 유전체적 특징이 대산소화 사건 동안 획득되었을 가능성을 시사하는 증거를 제공할 수 있다.[37] 다른 연구에서는 동물 위장관에서 분리된 Thermoplasmatales 계통의 세 균주가 진화적 차이점을 보였다. 대부분의 메테인 생성균 유전체에 존재하는 진핵생물 유사 히스톤 유전자가 이들 균주에는 존재하지 않았는데, 이는 Thermoplasmatales 및 관련 계통 내에서 조상 분기 과정에서 해당 유전자가 손실되었음을 시사한다.[38] 또한, Methanomassiliicoccus 그룹은 메테인 생성의 초기 여러 단계를 암호화하는 많은 일반적인 유전자를 잃어버린 것으로 보이는 유전체를 가지고 있다. 이러한 유전자들은 새로운 메틸화 메테인 생성 경로를 암호화하는 유전자로 대체된 것으로 보인다. 이 새로운 경로는 여러 유형의 환경에서 보고되어 환경 특정적이지 않은 진화를 나타내며, 조상 분기(ancestral divergence)를 나타낼 수 있다.[39]
8. 생명공학적 응용
메테인 생성균은 혐기성 소화 능력을 통해 다양한 생명공학 분야에서 활용된다. 특히 폐수 처리와 바이오가스 생산 분야에서 중요한 역할을 담당한다.[50] 혐기성 소화조에서 유기 오염 물질을 분해하여 수질을 개선하고, 이 과정에서 발생하는 메테인 가스는 재생 가능 에너지원으로 활용될 수 있다.[53] 이를 통해 폐수 처리 공정의 지속 가능성을 높이고 비용 효율성을 개선할 수 있다.[50]
메테인 생성균을 이용한 기술은 농업 폐수와 같이 유기물이 풍부한 폐수로 인한 부영양화와 같은 환경 문제를 완화하는 데 기여한다. 또한, 메테인을 에너지원으로 활용함으로써 강력한 온실가스인 메테인이 대기 중으로 방출되는 것을 막는 효과도 있다.
다양한 폐수 특성에 맞춰 적합한 메테인 생성균을 선택하고, 처리 효율을 높이기 위해 미생물 다양성을 활용하거나[54] 극한 조건에서도 안정적으로 작동하는 차세대 반응기를 개발하는 등[55] 관련 연구가 활발히 진행되고 있다. 메탄 생성균의 느린 증식 속도를 고려하여 균체를 효과적으로 유지하기 위한 다양한 바이오리액터 설계 또한 중요한 연구 분야이다.
8. 1. 폐수 처리
메테인 생성균은 혐기성 소화조에서 폐수 및 수성 유기 오염 물질을 처리하는 데 널리 사용된다. 산업계는 폐수 분해 과정에서 바이오메테인을 생산하는 메테인 생성균의 능력을 활용하여 공정을 지속 가능하고 비용 효율적으로 만들고 있다.[50]혐기성 소화조에서 일어나는 생물학적 분해는 서로 다른 미생물들이 협력하여 진행하는 4단계 과정이다.[51]
# 가수분해: 스트렙토코쿠스(Streptococcus) 및 엔테로박테리움(Enterobacterium)과 같은 혐기성 세균이 불용성 중합 유기 물질을 분해한다.[52]
# 산 생성: 산 생성균이 폐수 내의 용존 유기 오염 물질을 지방산으로 분해한다.
# 아세트산 생성: 아세트산 생성균이 지방산을 아세테이트로 전환한다.
# 메탄 생성: 메테인 생성균이 아세테이트를 기체 메테인으로 대사한다. 부산물인 메테인은 수성 층을 벗어나 소화조 내에서 폐수 처리 동력원으로 사용될 수 있어, 자체 유지 가능한 시스템을 구축하는 데 기여한다.[53]
메테인 생성균은 폐수 유출수에서 유기 물질의 농도를 효과적으로 감소시킨다. 예를 들어, 유기 물질이 풍부한 농업 폐수는 수생 생태계 악화의 주요 원인이며, 이는 부영양화와 같은 심각한 문제를 일으킬 수 있다. 혐기성 소화를 통한 폐수 정화는 이러한 문제를 예방할 뿐만 아니라, 소화조 내에서 메탄 생성을 통해 바이오메탄을 에너지 생산에 활용하고 강력한 온실가스인 메테인이 대기로 방출되는 것을 막는다.
폐수의 유기 성분은 매우 다양하며, 유기 물질의 화학 구조에 따라 특정 메테인 생성균이 혐기성 소화 과정에서 우위를 점하게 된다. 예를 들어, ''Methanosaeta'' 속의 메테인 생성균은 팜 오일 공장 폐수(POME) 및 양조장 폐기물 소화 과정에서 주로 발견된다. 처리 과정에서 유기물 함량을 줄이기 위해 더 높은 미생물 다양성을 통합하는 등 폐수 처리 시스템을 현대화하기 위한 연구가 미생물 및 화학 공학 분야에서 활발히 진행 중이다.[54] 현재 차세대 다단계 다상 혐기성 반응기 및 상향류 슬러지 베드 반응기 시스템은 높은 부하의 폐수 투입, 극한 온도 조건 및 잠재적인 저해 화합물에 대응할 수 있도록 혁신적인 기능을 갖추도록 설계되고 있다.[55]
메탄 생성 경로는 주로 바이오 리액터를 이용한 메탄 가스 회수 및 에너지 회수형 폐수 처리에 응용된다. 이는 필연적으로 혐기성 생물 처리 방식이며, 활성 슬러지법과 같은 호기성 생물 처리 방식과 비교했을 때 다음과 같은 특징을 가진다.
메탄 생성 경로와 호기성 처리(활성 슬러지법) 비교:
구분 | 메탄 생성 경로 (혐기성 처리) | 호기성 처리 (활성 슬러지법) |
---|---|---|
장점 | 탄소가 메탄 가스가 되어 잉여 슬러지 발생률이 낮음. 소화 슬러지는 안정화되어 부패하기 어려움. | 슬러지 발생률이 상대적으로 높음. |
폭기 장치 불필요 (단, 교반 장치로 가스 교반 송풍기 사용 가능). | 폭기 장치 필수. | |
연료로 이용 가능한 바이오 가스 회수 가능 (단, 황화 수소, 실록산 제거 필요). | 바이오가스 회수 불가. | |
체류 시간이 길고 극단적 환원 상태 유지로 대부분의 병원균 사멸. | 병원균 제거 효과 상대적으로 낮음. | |
벌킹 현상 없음 (단, 다른 원인에 의한 발포로 고액 분리 방해 가능). | 벌킹 발생 가능성 있음. | |
황화 수소에 의해 유해 중금속 이온이 난용성 황화물로 고정 및 분리됨. | 중금속 처리 별도 공정 필요. | |
단점 | 반응 속도가 느려 체류 시간이 길고 처리 장치 용적이 커짐. | 반응 속도가 빠르고 처리 장치 용적이 작음. |
질소로부터 생성된 암모니아가 높은 pH에서 독성을 나타내며, 난용성 MAP 결정이 장치 내 축적될 수 있음. | 질소 제거를 위한 별도 공정(탈질) 필요. | |
반응 유지를 위해 필요한 유기물 농도가 높고, 저농도까지 정화하기 어려워 마무리 공정으로 호기 처리가 필요할 수 있음. | 저농도 유기물 처리 가능. | |
메탄균 활성 저하 시 휘발성 지방산 잔류로 악취 발생 가능. | 운전 조건 불안정 시 악취 발생 가능. |
메탄 생성균을 이용한 처리 기술은 다양한 분야에 적용된다.
메탄 생성균 활용 분야:
분야 | 설명 | 주요 운용 조건 |
---|---|---|
폐수 처리 | 하수 처리장 등의 혐기성 소화조나 고농도 유기 폐수 처리에 사용. | 함수율 95% 이상 |
폐기물 처리 | 가축 분뇨 등 유기 폐기물을 퇴비화하고 발생 가스도 활용. 독일 등에서 도입 사례 다수. | 함수율 90% 이상 |
건식 처리 | 도시 쓰레기 (음식물 쓰레기, 고지)를 고온 발효시키는 방식. 벨기에, 덴마크 등에서 개발. | 함수율 70% 이상 |
메탄 세균은 증식 속도가 느리기 때문에 처리수와 함께 유실되는 것을 방지하고 균체를 효과적으로 유지하기 위해 다양한 메탄 발효 반응기가 개발되었다. 주요 반응기 종류는 혐기성 고정상법(UAFP: Upflow Anaerobic Filter Process), 혐기성 유동상법(AFBR: Anaerobic Fluidized Bed Reactor), 상향류 혐기성 슬러지상 반응기(UASB: Upflow Anaerobic Sludge Blanket Reactor) 등이 있다.
8. 2. 바이오가스 생산
메테인 생성균은 혐기성 소화조에서 폐수 및 수성 유기 오염 물질을 처리하는 데 널리 사용된다. 산업계는 폐수 분해 과정에서 바이오메테인 생성을 수행하는 메테인 생성균의 능력에 주목하여 공정을 지속 가능하고 비용 효율적으로 만들었다.[50]혐기성 소화조에서 일어나는 생물학적 분해는 서로 다른 미생물들이 수행하는 4단계 협력 작용을 포함한다.[51]
# '''가수분해''': 스트렙토코쿠스(Streptococcus) 및 엔테로박테리움(Enterobacterium)과 같은 혐기성 세균이 불용성 중합 유기 물질을 분해한다.[52]
# '''산 생성''': 산 생성균이 폐수 내의 용존 유기 오염 물질을 지방산으로 분해한다.
# '''아세트산 생성''': 아세트산 생성균이 지방산을 아세테이트로 전환한다.
# '''메탄 생성''': 메테인 생성균이 아세테이트를 기체 메테인으로 대사한다. 부산물인 메테인은 수성 층을 벗어나 소화조 내에서 폐수 처리 동력원으로 사용되어 자체 유지 메커니즘을 생성한다.[53]
메테인 생성균은 또한 폐수 유출수에서 유기물의 농도를 효과적으로 감소시킨다. 예를 들어, 유기 물질이 풍부한 농업 폐수는 수생 생태계의 주요 악화 원인이 되어 왔으며, 화학적 불균형은 부영양화와 같은 심각한 결과를 초래할 수 있다. 혐기성 소화를 통해 폐수 정화는 수계에서 예상치 못한 번식을 예방할 수 있을 뿐만 아니라 소화조 내에서 메탄 생성을 통해 바이오메탄을 에너지 생산에 활용하고, 강력한 온실가스인 메테인이 대기 중으로 방출되는 것을 방지한다.
폐수의 유기 성분은 매우 다양하며, 유기 물질의 화학 구조에 따라 혐기성 소화를 수행하기 위한 특정 메테인 생성균이 선택된다. 예를 들어, ''Methanosaeta'' 속의 구성원은 팜 오일 공장 폐수(POME) 및 양조장 폐기물 소화에서 우위를 점한다. 폐수 처리 시스템을 현대화하여 처리 과정에서 유기물 함량을 줄이기 위해 더 높은 미생물 다양성을 통합하는 연구가 미생물 및 화학 공학 분야에서 활발히 진행 중이다.[54] 현재 차세대 다단계 다상 혐기성 반응기 및 상향류 혐기성 슬러지상 반응기(UASB: Upflow Anaerobic Sludge Blanket Reactor) 시스템은 높은 부하의 폐수 투입, 극한 온도 조건 및 가능한 저해 화합물에 대응할 수 있도록 혁신적인 기능을 갖도록 설계되었다.[55]
주로 메탄 가스를 얻는 바이오 리액터로서의 응용이 활발하며, 에너지 회수형 폐수 처리에 사용되고 있다. 메탄 생성 경로는 필연적으로 혐기성 생물 처리이며, 활성 슬러지법 등 호기성 생물 처리에 비해 다음과 같은 특징을 가진다.
구분 | 장점 | 단점 |
---|---|---|
메탄 생성 경로 |
메탄 발효는 다음과 같은 분야에서 응용된다.
분야 | 내용 | 함수율 |
---|---|---|
폐수 처리 | 하수 처리장 등의 혐기성 소화조나 고농도 유기 폐수 처리 | 95% 이상 |
폐기물 처리 | 가축 분뇨 등의 유기 폐기물을 퇴비화하고, 가스도 활용 (독일에서 도입 사례 다수) | 90% 이상 |
건식 처리 | 도시 쓰레기 (음식물 쓰레기와 고지)를 고온 발효시키는 방식 (벨기에, 덴마크에서 개발) | 70% 이상 |
메탄 세균은 증식 속도가 느리기 때문에, 처리수와 함께 유실되지 않도록 균체를 유지하기 위한 다양한 메탄 발효 반응기가 개발되었다.
- 혐기성 고정법 (UAFP: Upflow Anaerobic Filter Process)
- 혐기성 유동상법 (AFBR: Anaerobic Fluidized Bed Reactor)
- 상향류 혐기성 슬러지상 반응기 (UASB: Upflow Anaerobic Sludge Blanket Reactor)
9. 지구 환경에 대한 영향
혐기성 환경에서 메테인 생성균은 다른 형태의 혐기성 호흡 과정에서 발생하는 과도한 수소와 발효 생성물을 제거하는 중요한 생태학적 역할을 수행한다.[14] 이들은 일반적으로 산소, 질산염, 삼산화철(Fe(III)), 황산염과 같은 전자 수용체가 고갈된 환경에서 번성한다. 이러한 환경에는 습지 및 논 토양, 반추동물, 절지동물, 인간 등 다양한 동물의 소화관,[15][16][17] 폐수 처리장 및 매립지, 심해 해양 퇴적물, 열수 분출공 등이 포함된다.[18] 깊은 현무암 암석이나 해령 근처에서는 올리빈의 사문암화 반응, 물의 열분해 및 방사선 분해를 통해 생성된 수소를 이용하기도 한다. 이는 로스트 시티 수열구 등에서 관찰되었다.
메테인 생성균은 대륙 연안 퇴적물이나 퇴적률 및 유기물 함량이 높은 수생 퇴적물에서 유기 탄소를 다시 광물화하는 주요 역할을 담당한다. 특정 압력과 온도 조건 하에서는 이들이 생성한 생물 기원 메탄이 메탄 클라트레이트 형태로 대규모로 축적될 수 있으며,[19] 이는 대륙 연안 퇴적물에 저장된 유기 탄소의 상당 부분을 차지하며 강력한 온실 기체의 주요 저장고를 나타낸다.[20]
메테인 생성균은 지구의 다양한 극한 환경에서도 발견된다. 그린란드의 3km 두께 얼음 아래나 뜨겁고 건조한 사막 토양에서도 서식이 확인되었다.[21] 깊은 지하 환경에서는 가장 흔하게 발견되는 고세균 중 하나이다. 그린란드 빙하 코어 샘플 연구에서는 145°C에서 -40°C에 이르는 넓은 온도 범위에서 활동하며 손상된 거대 분자를 복구하는 능력도 확인되었다.[21] 또한 미국 유타, 아이다호, 캘리포니아 및 캐나다, 칠레의 사막 토양과 증기 샘플에서도 생존 가능한 메테인 생성균이 발견되었는데, 특히 유타의 화성 사막 연구 기지 근처 샘플에서 뚜렷한 증거가 나타났다.[22][23]
이러한 극한 환경 생존 능력 때문에 일부 과학자들은 화성 대기에서 검출된 메탄이 화성 고유의 메테인 생성균 활동의 증거일 수 있다고 제안한다.[24] 2019년 6월에는 NASA의 큐리오시티 로버가 메탄을 감지했는데, 이는 지하 미생물 활동의 가능성을 시사하며 화성의 생명체 탐사에 중요한 단서를 제공했다.[25]
한편, 메테인 생성균이 방출하는 메탄은 강력한 온실 기체로서 지구 온난화에 영향을 미치는 주요 요인 중 하나이다.[76][77]
9. 1. 온실가스 배출
자연 환경에서 대기 중으로 방출되는 메탄은 온실 기체이며, 이산화 탄소의 20~30배에 달하는 온실 효과를 가지고 있어 지구 온난화에 미치는 영향이 우려된다. 현재는 이산화 탄소가 온난화의 주요 원인으로 지목되지만, 메탄을 포함한 아산화 질소, 오존, 프레온 등 다른 온실 기체의 배출량 증가 추세와 온난화 기여율을 고려할 때, 50년 후에는 이들 기체의 온실 효과가 이산화 탄소를 넘어설 수 있다는 예측도 있다.원시 지구에서는 메테인 세균이 방출하는 메탄이 지구 대기를 따뜻하게 유지하여 생명의 진화를 촉진했을 가능성이 제기된다[76][77]。 또한, 환경 내 니켈 농도 감소가 메테인 세균의 번식을 억제하여 메탄 방출량이 줄어들었고, 이것이 남세균의 등장과 대기 중 산소 농도 증가로 이어졌다는 가설도 있다[78]。
대기 중 메탄 농도는 17세기 이전까지 비교적 일정하게 유지되었으나, 인구 증가와 산업 혁명을 거치면서 지속적으로 증가해왔다. 특히 지난 50년 동안 메탄 발생량은 두 배로 증가했는데, 이는 논이나 가축 사육과 같은 인간 활동의 영향이 큰 것으로 분석된다. 메테인 세균이 관여하는 메탄 생성량은 연간 3억~7억 톤에 달하는 것으로 추정되며, 이는 메테인 세균과 관련 없는 자연 발생량(연간 5천만~1억 5천만 톤)과 비교할 때 매우 큰 비중을 차지한다.
이러한 메탄 배출을 줄이기 위해 다양한 연구가 진행 중이다. 예를 들어, 논에서 볏짚을 바로 사용하기보다 발효시켜 퇴비로 만들어 사용하면 메탄 발생을 억제할 수 있다는 연구 결과가 있다. 또한, 가축 사육 과정에서 발생하는 메탄을 줄이기 위한 노력도 이루어지고 있다.
9. 2. 지구 온난화 억제 연구
자연 환경에서 대기 중으로 방출되는 메탄은 온실 기체이며, 이산화 탄소의 20~30배에 달하는 강력한 온실 효과를 가지고 있어 지구 온난화에 미치는 영향이 우려된다. 현재는 이산화 탄소가 온난화의 주된 원인으로 지목되지만, 메탄을 포함한 아산화 질소, 오존, 프레온 등 다른 온실 기체의 농도 증가 추세를 고려할 때, 50년 후에는 이들의 온실 효과가 이산화 탄소를 넘어설 가능성도 제기된다.대기 중 메탄 농도는 17세기 이전까지 비교적 일정하게 유지되었으나, 인구 증가와 산업 혁명을 거치면서 지속적으로 증가해왔다. 특히 지난 50년간 메탄 발생량은 두 배로 증가했는데, 이는 주로 논이나 가축 사육과 같은 인간 활동에 의한 것으로 분석된다. 메탄 세균은 이러한 메탄 발생에 큰 영향을 미치는데, Zinder의 연구에 따르면 연간 발생하는 메탄 중 메탄 세균에 의한 양은 3억ton~7억ton에 달하는 반면, 메탄 세균과 관련 없는 발생량은 5000만ton~1.5억ton 수준으로 추정되어 메탄 세균의 기여도가 매우 크다는 것을 알 수 있다.
이에 따라 오니(슬러지) 제거 등 메탄을 유용하게 활용하려는 노력과 함께, 논이나 가축으로부터의 메탄 발생을 줄이기 위한 연구가 활발히 진행되고 있다. 예를 들어, 논에 볏짚을 그대로 사용하는 것보다 한 번 발효시켜 퇴비로 만들어 사용하면 메탄 발생을 억제하는 데 효과적이라는 연구 결과가 있다.
10. 생명의 진화
메테인 세균을 비롯한 여러 원핵생물들이 공생하여 진핵생물이 되었고, 마침내 인류로 진화했다는 설이 있다[79][80][81]. 특히 메테인 세균을 진핵생물 자체의 기원으로 보는 설을 수소 가설이라고 한다.
11. 외계 생명체의 가능성
메테인 세균은 지구의 여러 극한 환경에서도 발견된다. 그린란드의 수 킬로미터 얼음 아래에 묻혀 있거나 뜨겁고 건조한 사막 토양에서도 살고 있는 것이 확인되었다. 이들은 깊은 지하 서식지에서 가장 흔한 고세균으로 알려져 있다. 실제로 캘리포니아 대학교 버클리 연구진은 그린란드 빙하 약 3km 아래에서 채취한 얼음 코어 샘플에서 살아있는 메테인 생성 미생물을 발견했다. 또한 이 미생물들이 -40°C에서 145°C에 이르는 넓은 온도 범위에서 거대 분자 손상을 복구하는 능력을 갖추고 있다는 사실도 확인되었다.[21]
다른 연구[22]에서도 지구의 혹독한 환경에서 메테인 세균이 발견되었다. 연구자들은 미국의 유타, 아이다호, 캘리포니아 및 캐나다와 칠레의 5개 사막 환경에서 토양 및 증기 샘플을 채취하여 분석했다. 그 결과, 유타의 화성 사막 연구 기지 근처에서 채취한 5개의 토양 샘플과 3개의 증기 샘플에서 살아있는 메테인 세균의 증거를 찾아냈다.[23]
이러한 발견은 외계 생명체의 가능성에 대한 중요한 단서를 제공한다. 일부 과학자들은 화성 대기에서 메탄이 발견된 점을 근거로, 화성에 메테인 세균과 같은 생명체가 존재할 수 있다는 가설을 제기했다.[24] 2019년 6월에는 NASA의 큐리오시티 로버가 화성에서 메탄을 탐지했는데, 이는 메테인 세균과 같은 지하 미생물에 의해 생성되었을 가능성이 있어 화성의 생명체 존재 가능성에 대한 기대를 높였다.[25]
지구 외 다른 행성이나 위성의 대기 성분에 메탄이 포함되어 있다면, 그곳에 외계 생명체로서 메탄 세균이 존재할 가능성을 생각해볼 수 있다. 실제로 메테인 세균은 초기 원시 지구에도 존재했을 것으로 추정되며, 현재 지구에 사는 메탄 세균은 그 후손으로 여겨진다.[82][83][84][85]
12. 역사
- 1776년 알레산드로 볼타는 이탈리아 북부 마조레 호수 밑바닥에서 솟아오르는 기체를 모아 연소시키는 실험을 통해 메테인을 발견했다.
- 1783년 미국의 페인과 조지 워싱턴 역시 볼타와 유사한 관찰 결과를 기록했다.
- 1868년 루이 파스퇴르의 제자인 베캄프는 미생물이 에탄올을 혐기적 분해하는 과정에서 메탄이 발생한다는 사실을 확인했다.
- 1875년부터 1900년 사이에 진행된 연구들을 통해, 메탄 생성이 반추위 내 셀룰로스 분해와는 직접적인 관련이 없다는 것이 밝혀졌다.
- 1910년 바이에링크의 제자인 젠겐은 여러 종류의 메탄 생성 세균(메탄균)을 관찰했다.
- 1936년 바커는 한천 갈라진 틈 배양법을 이용하여 메탄균을 순수 분리하는 방법을 확립했다. 다만, 이때 분리된 메탄균은 실제로는 여러 종류의 미생물이 섞인 혼합 배양 상태였던 것으로 추정된다.
- 1947년 슈넬렌은 ''Methanobacterium formicicum''과 ''Methanosarcina barkeri''를 성공적으로 순수 분리했다.
- 1950년 훙게르테는 혐기성 세균을 공기 중에서 다룰 수 있는 가스 분사법과 한천 배지 위에 콜로니를 형성시키는 롤 튜브법 등 혐기성 미생물 배양 기술을 개발했다.
- 1967년 브라이언은 기존에 단일 종으로 여겨졌던 ''Methanobacterium omelianskii''가 실제로는 ''M. bryantii''와 세균인 S균이 함께 자라는 혼합 배양계임을 규명했다.
- 1996년 매우 높은 온도에서도 생존 가능한 초고온성 메탄균인 ''Methanocaldcoccus (Methanococcus) jannaschii''의 전체 게놈 서열이 해독되었다.[86]
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